研究 [12–15],这使得拟谷盗成为比较遗传学、分子生物学、进化和发育等不同生物过程的绝佳模型 [2, 10, 11]。鉴于果蝇的衍生生物学,拟谷盗也
GSK864(IDH1I)和DNA破坏特工Olaparib(OLAP)或顺铂(CIS)单独或合并。%,并将其标准化为对照。d)在谷氨酰胺饥饿的条件下培养了指定的CCNE1-低(橙色)和 - 高(紫色)同源细胞,并单独或单独或单独或合并用DNA损害剂Olaparib(OLAP)或顺铂(Cisplatin(Cis)处理。%的细胞,并将其标准化为媒介物对照。e)将IP基因细胞注射到免疫功能低下的雌性小鼠(n = 8/组)中。表达空载体(ev)=橙色的单元格;表达CCNE1(CCNE1)=紫色的细胞。单独或组合使用媒介物,IDH1抑制剂GSK864(IDH1I)和Olaparib(OLAP)处理小鼠。在端点,通过计算腹膜肿瘤结节来计算肿瘤负担。f)仅用IDH1抑制剂GSK864(IDH1I)处理指示的CCNE1高细胞,单独使用DNA破坏药物Olaparib(OLAP)或顺铂(CIS)(CIS)(cis)(黄色)(黄色)(黄色)(黄色),并与细胞渗透性的A kg(绿色)或柠檬酸盐(蓝色)结合使用。%,并将其标准化为对照。g)在谷氨酰胺饥饿条件下培养了指定的CCNE1高细胞,并用DNA损伤剂Olaparib(OLAP)或顺铂(CIS)(CIS)(CIS)(黄色)和可渗透的细胞渗透kg(绿色)处理。%的细胞,并将其标准化为媒介物对照。h)依赖性二氧酶CRISPR KO屏幕的示意图。i)CRISPR KO屏幕的分析。所有图表示平均值±SD。显示为Log2折叠分数(CCNE1 + Olaparib vs. CCNE1)与(EV + Olaparib vs.EV)中的负分数的变化。J)在两个CCNE1高细胞系中5个负富集基因的Venn图。k)用SHGFP(Shcont-紫色)或两个靶向TMLHE的独立shRNA(SHTMLHE#1-浅蓝色,浅蓝色,SHTMLHE#2-深蓝色)转导指示的CCNE1高细胞,并用DNA损害剂Olaparib(Olap)用Cell-Cell-clip-carn的dna损害剂处理(la)或l-CARNIT(l-CARNIT)。%的细胞,并将其标准化为媒介物对照。l)单独使用肉碱合成抑制剂(Mildro)或单独使用DNA损伤剂Olaparib(OLAP)(紫色)和组合(黄色)处理指示的CCNE1高细胞。组合处理的细胞用可渗透的细胞A kg(绿色)或L- carnitine(L-Carn; Maroon)补充。%的细胞,并将其标准化为媒介物对照。m)用IDH1抑制剂GSK864(IDH1I)和单独的DNA损伤剂Olaparib(OLAP)(紫色)和组合(黄色)处理指示的CCNE1高细胞。组合处理的细胞用L-肉碱(L-Carn; Maroon)补充。%的细胞,并将其标准化为媒介物对照。n)在谷氨酰胺饥饿条件下(紫色)培养指示的CCNE1-高细胞,并单独用DNA损伤剂Olaparib(OLAP)(黄色)或补充L-Carnitine(L-Carn; Ma-Roon)。%,并将其标准化为对照。**** p <0.005,ns =不显着o)kg是tmlhe和carnitine上游的示意图。(A-D,F)显示的是来自每个等源性细胞系对中至少3个独立实验的代表性数据。(G,K-N)是来自每个等源性细胞系对中2个独立实验的代表性数据。
小球形头足动物通过腺苷脱氨基表现出异常广泛的mRNA,但尚不清楚基本机制。由于作用于RNA(ADAR)酶的腺苷脱氨酶会催化这种形式的RNA编辑,因此头足类直系同源物的结构和功能可能会提供线索。最近的基因组测序项目提供了蓝图,以全面互补。我们实验室的先前结果表明,Squid表达了一个ADAR2同源物,具有两个名为SQADAR2A和SQADAR2B的剪接变体,并且这些消息经过广泛编辑。基于章鱼和鱿鱼基因组,转录组和cDNA克隆,我们发现在小卵形中表达了另外两个ADAR同源物。第一个与脊椎动物ADAR1直系同源。与其他ADAR1不同,它包含一个新型的N末端结构域,为641 AA,预测为无序,包含67个磷酸化基序,并且具有氨基酸组成,丝氨酸和碱性氨基酸的氨基酸组成异常高。编码sqadar1的mRNA本身是广泛编辑的。也存在于任何脊椎动物同工型的直系同源的sqadar/d-like酶。编码SQADAR/D类的消息未编辑。使用重组SQADAR的研究表明,仅在完美的双链dsRNA和鱿鱼钾通道mRNA底物上,只有SQADAR1和SQADAR2是活跃的腺苷脱氨酶。sqadar/d样对这些底物没有活性。对这些底物没有活性。总体而言,这些结果揭示了SQADARS中的一些独特特征,这些特征可能会导致头足类动物中观察到的高级RNA回收。
(ssDNA) 是优于 dsDNA 的 HDR 模板。在此,我们报告了一项系统研究,比较了 HEK293 细胞中的 dsDNA HDR 模板和 IDT Ultramer® 寡核苷酸 ssDNA HDR 模板。测试了链选择和同源臂长度,以确定 HDR 在 Cas9 dsDNA 断裂点创建新的限制位点(6 个碱基插入)的效率。使用较长 ssDNA HDR 模板的初步实验表明,与较短 ssDNA 模板具有类似的优势和行为。具有不对称同源臂的模板的 HDR 插入。使用具有不对称同源臂的 HDR 模板导致 EcoRI 插入率与对称同源臂的插入率相似。使用靶向链模板获得了高 HDR 效率,其中
癌症治疗的合成致死策略利用癌症特异性基因缺陷来识别对肿瘤细胞存活至关重要的靶点。本文我们表明,RAD27/FEN1 编码瓣状内切酶 1 (FEN1),这是一种在 DNA 复制和修复中发挥作用的结构特异性核酸酶,与酿酒酵母基因组不稳定性基因具有最多的合成致死相互作用,是基于抑制剂的方法杀死同源重组 (HR) 缺陷癌症的可用药物靶点。研究表明,小分子 FEN1 抑制剂和 FEN1 小干扰 RNA (siRNA) 可选择性杀死 BRCA1 和 BRCA2 缺陷的人类细胞系,从而证实了 HR 缺陷癌症容易受到 FEN1 缺失的影响。此外,在小鼠中重现了对 FEN1 抑制的不同敏感性,小分子 FEN1 抑制剂降低了药物敏感但无耐药性癌细胞系中形成的肿瘤的生长。FEN1 抑制在敏感和耐药细胞系中均诱导了 DNA 损伤反应;然而,即使去除抑制剂,敏感细胞系也无法恢复和复制 DNA。尽管 FEN1 抑制在敏感细胞中将 caspase 激活到更高水平,但这种凋亡反应发生在 p53 缺陷细胞中,而泛 caspase 抑制剂无法阻断细胞杀伤。这些结果表明,FEN1 抑制剂具有治疗靶向 HR 缺陷癌症的潜力,例如由 BRCA1 和 BRCA2 突变和其他遗传缺陷引起的癌症。
叶绿体形态在免疫期间发生变化,从而产生了称为stromules的小管状结构。stromules沿着微管延伸,并沿核细胞锚定向肌动蛋白丝,以促进核周chlo-oplast簇。这促进了防御分子/蛋白质从叶绿体到核的运输。缺乏茎在免疫中的直接作用的证据,因为目前,没有已知的基因来调节Stromule生物发生。我们表明,在TNL [TIR(Toll/Interleukin-1 Receptor) - 型链球菌形成所必需的含有驱动蛋白的Calponin同源(CH)结构域(诱导Stromules 1)所需的calponin同源(CH)域(诱导Stromules 1)是必需的。此外,tnl介导的对细菌和病毒病原体的免疫力是必需的。基斯1的微管结合运动结构域是基质形成所必需的,而肌动蛋白结合,CH结构域是核叶叶绿体簇需要的。我们表明,KIS1通过早期的免疫信号成分EDS1和PAD4与水杨酸 - 需要Kis1的stromules发挥作用。因此,KIS1代表stromule生物发生的玩家。
目标两次Covid-19爆发发生在2022年初在河南省发生,其中一个是三角洲的爆发,另一个是Omicron变体爆发。疫苗在爆发时使用的疫苗被灭活,为91.8%;蛋白质亚基,7.5%;和腺病毒5向量,0.7%的疫苗。暴发提供了一个机会,可以评估同源灭活的Covid-19疫苗促进剂剂量的特异性突破性感染率和相对的保护效果,以抗症状感染和肺炎。设计回顾性队列研究方法我们使用时间依赖性的COX回归模型对感染个体的密切接触进行回顾性队列研究,评估了相对疫苗有效性(RVE)。人口统计学和流行病学数据是从当地疾病控制和预防中心获得的;临床和实验室数据是从Covid-19指定医院获得的。疫苗接种历史是从国家Covid-19-19疫苗接种数据集获得的。所有数据均通过国家识别号链接。在784个SARS-COV-2感染中的结果,379(48.3%)是由三角洲引起的,405(51.7%)是由Omicron引起的,突破性率分别为9.9%和17.8%。增强个体的突破率为8.1%和4.9%。结论中国共同疫苗接种在中国疫苗接种提供了良好的保护,以防止有症状的Covid-19和Covid-19-19,由三角洲和Omicron变体引起的肺炎。保护后6个月疫苗接种后6个月下降,但通过在初级系列后6个月给定的同源灭活助推器剂量恢复。与感染前接种初次疫苗接种序列≥180天的受试者相比,Cox回归模型表明,同源的促进疫苗接种在统计学上与统计学上显着相关,这与防护剂的保护症具有显着相关性(RVE 59%; RVE 59%; 95%CI 13%至80%至80%)和DELTA引起的7%和OM 62%; 95%CI; 95%ci; 95%; 95%; 95%; 95%; 95%; 95%; 95%; (RVE 87%; 95%CI 3%至98%)。
CRISPR / Cas12a 是一种单效应核酸酶,与 CRISPR / Cas9 一样,由于其能够产生靶向 DNA 双链断裂 (DSB) 而被用于基因组编辑。与 Cas9 产生的平端 DSB 不同,Cas12a 产生的粘性末端 DSB 可能有助于精确的基因组编辑,但这一独特功能迄今为止尚未得到充分利用。在当前的研究中,我们发现,短双链 DNA (dsDNA) 修复模板包含一个与 Cas12a 产生的 DSB 末端之一匹配的粘性末端和一个与 DSB 另一端相邻的基因组区域具有同源性的同源臂,能够精确修复 DSB 并引入所需的核苷酸替换。我们将这种策略称为“连接辅助同源重组”(LAHR)。与单链寡脱氧核糖核苷酸 (ssODN) 介导的同源定向修复 (HDR) 相比,LAHR 的编辑效率相对较高,这在报告基因和内源基因中均有体现。我们发现 HDR 和微同源介导的末端连接 (MMEJ) 机制都参与了 LAHR 过程。我们的 LAHR 基因组编辑策略扩展了基因组编辑技术的范围,并更广泛地了解了基因组编辑中涉及的 DNA 修复机制的类型和作用。
A0A011P7F8 Mannheimia granulomatis MgrCas9 1049 65.5 A0A0A2YBT2 Gallibacterium anatis IPDH697-78 GanCas9 1035 59.7 A0A0J0YQ19 Neisseria arctica NarCas9 1070 70.4 A0A1T0B6J6 [Haemophilus felis HfeCas9 1058 65.3 A0A1X3DFB7 Neisseria dentiae NdeCas9 1074 66.4 A0A263HCH5 Actinobacillus seminis AseCas9 1059 66 A0A2M8S290 Conservatibacter flavescens CflCas9 1063 64.2 A0A2U0SK41 Pasteurella langaaensis DSM 22999 PlaCas9 1056 63.9 A0A356E7S3巴斯德氏菌 PstCas9 1076 63 A0A369Z1C7 副流感嗜血杆菌 Hpa1Cas9 1056 64.8 A0A369Z3K3 副流感嗜血杆菌 Hpa2Cas9 1054 65.2 A0A377J007 皮特曼嗜血杆菌 HpiCas9 1053 65.2 A0A378UFN0 脱氮伯氏菌(脱氮奈瑟菌)
摘要:为了将转化的细胞与非转化细胞分离,抗生素可选标记基因通常用于遗传转化。获得转基因植物后,通常有必要从植物基因组中去除标记基因,以避免调节问题。但是,许多无标记的系统耗时且劳动力密集。同源性修复(HDR)是使用同源臂进行同源重组的过程,以实现DNA双链断裂(DSB)的精确修复。定期间隔间隔的短质体重复序列(CRISPR)/CRISPR相关蛋白9(CAS9)系统是一种强大的基因组编辑工具,可以有效地引起DSBS。在这里,我们分离了一个在茎,射击尖端和渗透性中高度表达的基因的水稻启动子(P SSI),并通过使用此P SSI驱动CRISPR/CAS9介导的HDR用于MarkerFree(PSSICHMF),从而确立了高耐高率序列 - 切除策略。在我们的研究中,在73.3%的T 0植物和T 1植物的83.2%中检测到PSSICHMF诱导的标记基因缺失。在T 1后代获得了高比例(55.6%)的纯合标记植物。重组GUS报告者ADAD分析及其对重组产物的测序显示由PSSICHMF方法介导的精确缺失和修复。总而言之,我们的CRISPR/CAS9介导的HDR自动拆卸方法提供了一种节省时间和有效的策略,用于从转基因植物中去除标记基因。