许多离子通道参与控制胰岛β细胞的胰岛素合成和分泌。上皮钠通道(ENAC),但是ENAC在胰腺β细胞中的生物学作用尚不清楚。在这里,我们将CRISPR/ CAS9基因编辑技术应用于鼠胰腺β-细胞系(MIN6 Cell)中的敲除α -ENAC基因。为α -ENAC的外显子设计了四个单个指定RNA(SGRNA)位点。具有较高活性的SGRNA1和SGRNA3并共转染到MIN6细胞中。通过处理一系列实验流,包括药物筛选,克隆和测序,获得了MIN6细胞中的α -ENAC基因敲除(α -enac - / - )。与野生型MIN6细胞相比,细胞活力和胰岛素含量在α -ENAC - / - MIN6细胞中显着增加。因此,由CRISPR/CAS9技术产生的α-ENAC - / - MIN6细胞增加了研究胰腺β细胞中α -ENAC的生物学功能的有效工具。
ACKNOWLEDGMENTS ......................................................................................... iii ABSTRACT ............................................................................................................... iv LIST OF ILLUSTRATIONS ..................................................................................... viii LIST OF TABLES .....................................................................................................................................................................................................................................................................................................INTRODUCTION ......................................................................................... 1 1.1 Water fleas: Daphnia spp......................................................................... 1 1.2 Significance of Research .......................................................................... 2 2.文献综述........................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................... 3 2.2胰岛素样生长因子基因基因METHODOLOGY ........................................................................................ 7 3.1 Animal Care ............................................................................................. 7 3.2 Target Design ........................................................................................... 7 3.2.1 Obtaining the EB1 sequence ........................................................... 7 3.2.2 sgRNA design .....................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................
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摘要欧洲传统的武器控制建筑正在崩溃。本文认为,经典的武器控制理论无法解释这一持续的过程。我建议,基于互惠和预防战争的技术措施,其潜在的稳定范式已经阻止了对实际的武器控制实践的全面了解,尤其是在欧洲。在这种情况下,我说明了有规律的武器控制已在三个历史阶段发展。在每种情况下,国家参与者都根据具体的地理战略状况来追求不同的理想类型目的:追求政治军事优势,正式创造危机稳定性以及国际关系的转变。在过去十年中,总体政治重点再次转移到了第一个因素。在新的战略竞争中,各州越来越不愿同意控制法规和透明度措施,因为这些措施可能会给对手带来优势。
价值主张成功的细胞疗法的开发需要多重编辑和有效的CMC流程,但是对多个平台和连续处理步骤的需求通常会导致复杂性和成本增加。BEKI基因编辑策略通过结合敲入和敲除其他基因的插入,降低毒性和靶向效果的效果来提供解决方案(图1a)。不需要的副作用,例如染色体易位的发生,将其降低至几乎不可检测的最小值(图。1C)。这种方法可以增强安全性,最大程度地减少原代细胞的损失,降低GMP成本并简化优化和验证过程,从而使其成为细胞治疗开发的有吸引力的选择。
动脉粥样硬化性心血管疾病 (ASCVD) 仍然是全球最大的死亡原因 2 。血脂异常是与 ASCVD 发展有关的一个关键的可改变的因果风险因素。最近,G 蛋白偶联受体家族的成员 G 蛋白偶联受体 146 (GPR146) 被证明是血浆胆固醇的调节剂 3,4 。GPR146 在小鼠体内的肝脏抑制已显示出良好的特性,它对高胆固醇血症和动脉粥样硬化具有保护作用,这种作用独立于低密度脂蛋白受体 (LDLR) 通路 3 。为了更好地理解所涉及的生物学机制,我们开发了一种先进的基因工程人类诱导多能干细胞 (hiPSC) 模型,该模型因 GPR146 而无效。 GPR146 -/- 细胞系 (ITXi001-A-1) 源自我们实验室先前从尿液祖细胞 (ITXi001-A) 1 中重新编程的对照 hiPSC 的基因组版本。基因组版本使用 Alt-R™ CRISPR-Cas9 系统 (Integrated DNA Technologies) 进行,针对两个等位基因上的 GPR146 外显子 2。ITXi001-A-1 是通过挑选单个菌落建立的,其基因型通过 PCR 筛选 (图 1A - 上图和下图) 并通过 Sanger 测序确认 (图 1B)。我们进一步表明,GPR146 基因的遗传版本不会诱导基因组的脱靶版本(筛选 10 个预测位点 - (补充文件 3A)),也不会诱导 ITXi001-A-1 细胞的基因组完整性(分析 24 个拷贝数变异)(补充文件 1)。我们验证了 ITXi001-A-1 细胞不含支原体(补充文件 3B),并且它们与最初采集的尿液细胞来自同一个体(16 个 STR 的亲子鉴定 - 补充文件 2)。总体而言,ITXi001-A-1 细胞呈现:I- 与 ITXi001-A 细胞相比具有相似的形态(图 1C)II- 多能性标志物的阳性表达(通过 OCT3/4 和 TRA-1–60 的免疫荧光染色检测)(图 1D)。 III- 多能性细胞表面标志表达阳性(流式细胞术检测 SSEA-4 和 TRA1-60)(图 1E)。IV- 多能性标志物的表达水平与 ITXi001-A 细胞相同(NANOG、POU5F1 和 SOX2 - 通过 RT-qPCR 测量)(图 1F)。V- 具有优异的分化为中胚层、内胚层和外胚层的能力(通过 SOX17 和 FOXA2(中胚层);T(TBXT) 和 HAND1(内胚层)以及 PAX6 和 SOX1(外胚层)的 RT-qPCR 评估,与 ITXi001-A 细胞相似)(图 1G)。
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