转基因株系采用第二代 CRISPRa 系统,该系统携带与异源三聚体 VPR 反式激活因子融合的核酸酶缺陷型 dCas9,该异源三聚体 VPR 反式激活因子由 VP64、p65 和 RTA 结构域组成。该系统可用于解释任何所需细胞类型的内源性调控机制。使用基于 CRISPR/Cas9 的基因组编辑方法,我们以 AAVS1 人类基因组位点为目标,分别引入先前描述的 dCas9VPR-tdTomato(Schoger 等人,2020 年)和嘌呤霉素盒,这些盒受 CAG 和 EF1a 启动子的控制(图 1 A)。采用优化的核转染方案转染 LhiPSC-GR1.1 细胞。转染后,选择具有 tdTomato 表达的细胞并通过 PCR 进行基因分型(图 1B,引物结合如图 1A 所示,黑色引物仅扩增野生型 (WT) 片段;绿色引物扩增插入的构建体)。随后,扩增、分析和冷冻保存两个阳性克隆(#2 和 #3)。DNA 测序数据证实了 AAVS1 基因座中的正确和纯合敲入转基因整合(图 1C,显示为克隆#2)。PCR 结果显示,在筛选的 15 个克隆中,11 个克隆含有纯合插入(命名为 CRISPRa 细胞),1 个克隆是杂合的,3 个克隆不含有插入而是含有 WT 完整基因座(用作对照细胞)(数据未显示)。通过分析 PCR 和测序预测的前五个脱靶位点进行脱靶分析;在这些位点中均未发现任何编辑事件。对照电穿孔和非电穿孔 (参考) 系用于比较 (补充图 1A)。所有系的支原体检测均为阴性。通过基于 SNP 的核型分析和标准 G 带证明了 CRISPRa 克隆 #2 和 #3 以及对照细胞的基因组完整性。未检测到数值或结构异常的证据 (图 1D)。与核转染 (图 1Ei) 和非核转染对照相比,细胞生长和形态正常。与对照 hiPSC 相比,CRISPRa 中的 dCas9 和 tdTomato 表达证实了转基因表达,如 Western blot (补充图 1B,显示克隆 #2 和 #3) 和共聚焦显微镜 (图 1Eii,显示克隆 #2,n = 3 个不同传代) 所示。通过免疫荧光分析干性标记 OCT4 的表达(图 1 Eiii)和流式细胞术分析(显示 94.2% OCT4 和 99.9% TRA1-60 阳性细胞(图 1 Eiv)(显示克隆 #2))来评估多能性。通过在 CRISPRa 和对照系中形成胚状体 (EB) 和定向分化来测试向所有三个胚层的自发分化能力。免疫荧光分析证实了 AFP、β-III-Tu bulin 和 α-平滑肌肌动蛋白 (ACTA2) 的表达,进一步支持内胚层、外胚层和中胚层的命运(图 1 F,显示克隆 #2 和 #3)。转录水平分析表明配对盒 3 ( PAX3 ) 和微管相关蛋白 2 ( MAP2 ) 的表达表明外胚层分化;T-box 转录因子 T ( TBXT ) 表明中胚层命运,而 α-Feto-Protein ( AFP ) 表明内胚层分化(补充图 1 C,显示克隆 #2 和 #3)。我们研究了 CRISPRa 系用于研究通过定向 2D 分化产生的心肌细胞的适用性,这种分化产生了自发跳动的细胞(视频作为补充材料提供),具有强大的 α-辅肌动蛋白 2 (ACTN2) 和心脏肌钙蛋白 T (TNNT2) 心脏标志物表达((补充图 1D,显示为克隆#2)。最后,我们通过确定与心脏肥大和代谢稳态有关的 KLF15 表达的诱导来测试 CRISPRa 系的功能。我们发现,与转染了非靶向 gRNA 的各自亲本系相比,设计用于结合 KLF15 转录起始位点 (TSS) 的 44 bp 5'-上游序列的单个指导 RNA 能够显着增强 CRISPRa 系(克隆#2 和#3)中 KLF15 的转录。对照细胞没有显示独立于转染的 gRNA 的活化(图 1G)。总之,使用完全表征的 hiPSC 系,我们生成了具有纯合靶向插入、正常核型和多能性的人类 CRISPRa 系,并显示出其激活
利什曼原虫是一种原生动物病原体,可导致利什曼病,这是一种被忽视的疾病,具有使人衰弱甚至可能危及生命的症状。利什曼原虫基因组非常动态,内容和结构均有变化。通常,这种高度变异(即可塑性),包括染色体和基因拷贝数变异、非整倍性和基因组重排,与其他生物体的 DNA 不稳定性有关。然而,在利什曼原虫中,这种固有的不稳定性可能被利用,不仅可以引入基因组异质性,还可以调节基因表达并产生增强适应性的特征。我们缺乏对这些寄生虫如何调节可塑性及其潜在后果的清晰而简洁的理解。因此,本研究课题的目的是汇总有关利什曼原虫利用基因组变异性为自己谋利的能力的重要报告,并收集有关基因组可塑性如何影响利什曼病的临床管理以及固有不稳定基因组的并发症对我们基因操作和研究这些非常规病原体的能力的值得注意的报告。拷贝数变异可以改变基因剂量,在利什曼原虫中,这些变化被认为促进了寄生虫种群的表型可塑性。在本研究课题中,Valdivia 等人报告了巴西利什曼病流行地区的寄生虫分离株之间的广泛基因组变异性,描述了在短短 2 年内种群中一种占主导地位的 L. infantum 核型被一个独特的亚群迅速取代。是否(以及哪些)环境因素可能导致种群中一种基因型相对于另一种基因型的扩张仍然未知。然而,这些分离株中保留的基因型多样性可能暗示着可选择的替代基因组库,这些基因组库可以响应外部刺激而快速扩增。尽管经常有关于利什曼原虫中 CNV 的报道,但这些变异对基因表达的影响和生物学后果也值得考虑,因为利什曼原虫似乎
急性淋巴细胞白血病(ALL)是由多种复发遗传畸变的星座驱动的异质癌。样品骨髓的易感性可以轻松进入癌细胞,并可以深入探索所有驱动全部的遗传学。自然而然地使用了每个新的GE网络工具,所有人的遗传星座通常是第一个探索的边界。这些深度探索导致了所有遗传星座的详细图(图1),这是世界卫生组织造血和淋巴组织肿瘤分类的基础。从1960年代建立核分型和染色体带时,调查人员开始了这项60年的发现旅程。此发现始于异常的整个染色体拷贝数,称为非整倍性。多余的染色体> 50,也称为高二倍体,是最常见的驱动因素(图1)。易位,其中一块染色体被异常融合,导致发现费城(pH)染色体T(9; 22)/ bcr :: abl1 and t(1; 19)/ tcf3 :: pbx1。不会更改诸如t(12; 21)/ etv6 :: runx1之类的频带模式的易位花费更长的时间才能屈服。与此发现并行的是更好的治疗方法。通过更好的治疗方法,研究人员发现这些遗传驱动因素是预后的,即他们预测复发的风险。遗传亚型的这种预后价值产发了遗传风险分层,并最终以遗传驱动的治疗,例如添加伊马替尼和dasatinib对pH值的添加。2使用单然而,核型淋巴细胞的困难以及对许多不同诊断平台的需求,例如多种荧光原位杂交(FISH)探针,有限的广泛使用遗传分层。在2000年代,基因阵列诱人地承诺了一个平台来询问所有人的遗传驱动因素。基因ex Prassion微阵列同时测量了数以万计基因的表达lev els,它允许发现“新颖”亚型1(后来发现是DUX4亚型)和pH样亚型。
偷旋紫杉醇(E. purpurea)已被用于预防和控制呼吸系统的感染疾病。在这项研究中,我们研究了甲乙发展曲霉氧霉素对锯齿状甲甲烷多核型甲甲虫对A型A型甲甲基甲甲型型甲状腺型感染的影响压力标记。forthymale白色新西兰兔子被划分为相等的群体;将第1组作为对照,第2组WA在室内感染了P.MultoctiDatepe a(4x107 cfu/ml/兔子)在实验开始(FBE)的第14天(FBE)的第14天,第3组被口服管理。 4WA在第14天FBE经胸膜的鼻内感染,然后用ENR霉菌素治疗(10 mg / kg b.w. < / div>在饮用水中)从第18至20天出现临床体征后。结果表明,兔子中的肿瘤性感染产生了大细胞多色染色性贫血(RBC = 5.26 x106/µl)(MCV = 76.06 fl,mcv = 76.06 fl,mCHC = 24.99%),leuk a/a/a/abiocy a。在吞噬百分比(51.60%)和吞噬指数(0.26)中。我们观察到总蛋白质,白蛋白和球蛋白的血清水平降低。此外,还记录了血清丙氨酸氨基转移酶(Alt,34.4 u/L)和碱性磷酸酶(ALP,27.80 u/L)的显着增加。还包括血清胆红素,总胆红素= 1.03mg/dl,直接bilirirubin = 0.61 mg/dliririririririricect = 0.61 mg/dliriririricect mg/dl)水平显着升高。血清尿素(47.32mg/dL)和肌酐水平(2.10 mg/dl)显着增加。此外,兔子中的多杆菌感染引起的氧化应激,在血清过酶(CAT,3.13 nmol/L)的显着降低中观察到,脂质过氧化(MDA,3.46 nmol/L)的升高。总而言之,与多洛昔氏菌的兔子相比,兔子型型兔子型在兔子感染前后的eChinecealtment能够改善所有研究参数的改变。关键词:兔子,紫锥花,Enroroxanin,basteurellamultocida,氧化应激。
腹部层析成像显示均匀增强的软组织密度后腹膜腹膜质量包含主动脉和下腔静脉,子宫笨重,腹水,腹水和一个笨重的固体右右附件空间,占据了病变。USG引导的附件质量活检,免疫染色显示肿瘤细胞对末端脱氧核苷酸转移酶(TDT)和CD20呈强阳性,CD3,CD3,CD3,CLOMOGRAGRANIN,突触素,突触possysin和desmin均为肿瘤细胞。骨髓检查显示70%的爆炸和细胞遗传分析显示,复杂的核型(> 3个异常)也包括TP53缺失(►图。1)。所有面板的反转录聚合酶链反应(RNA)为BCR-ABL,E2A-PBX,MLL-AF4和Tel-AML1融合转录本为阴性。该患者被归类为高风险前全部,并根据柏林 - 弗兰克富特协议(BFM 95)进行化学疗法。进取后,患者在临床上表现良好,没有有机疗法。她的外周血计数正常,骨髓完全处于形态缓解。经过1。5年的维护治疗后,患者出现了左侧的新发作lim,左臀部疼痛。没有其他宪法症状。在聚焦体格检查中,左髋部临时限制为40至45度;其余的运动是不受限制的。全身检查的其余部分是正常的。骨盆的磁共振成像暗示着左叶叶片的局灶性侵蚀,并在左叶窝中有大量收集。2)。进行了随后的骨髓抽吸物,没有发现所有复发的迹象。左右骨的核心活检表明,具有丰富的嗜酸性细胞质的非典型椭圆形到纺锤体细胞,带有液泡和多形囊泡,卵形,卵形对细胞的细胞核对CD163,cd45,cd45,cd45,cd45,cd45,cd45,ki-ki-kity sy的细胞核,cd163,cd45,kI-kI-67,kI-67,kI-67阴性,TDT和CD34负阴性,没有中间的反应性细胞,因此有利于诊断次级HS而没有任何复发的迹象(►图。正电子发射断层扫描显示在肺,胸膜,腹膜,胰腺和子宫的尾部,前腹壁,右臀区和
对最近的人类基因组组装的比较分析突出了显著的序列差异,这种差异在着丝粒等多态性位点内达到顶峰。这引发了一个问题,即依赖人类参考基因组来准确分析来自实验细胞系的测序数据是否合适。在这里,我们提出了一种称为“同基因组参考”的新方法,该方法利用匹配的参考基因组进行多组学分析。我们为人类视网膜上皮细胞 (RPE-1) 生成了一个新的二倍体基因组组装,RPE-1 是一种广泛使用的非癌症实验室细胞系,具有稳定的二倍体核型,呈现出完全跨越着丝粒的分阶段单倍型和染色体水平支架。利用该组装体,我们表征了 RPE- 1 独有的单倍型解析基因组变异,包括一个稳定的标记染色体 X,其中 73.18 Mb 的 10 号染色体片段重复易位至该细胞系特有的微缺失端粒 t(X q ;10 q )。比较分析揭示了着丝粒区域内的序列多态性,包括所有染色体单倍型之间的意外遗传和表观遗传多样性。使用我们的组装体作为参考,我们重新分析了我们自己的和公开的 RPE-1 中生成的测序、甲基化和表观遗传数据,这些数据之前已使用非匹配和非二倍体参考基因组进行分析。我们的结果表明,同基因组参考可改善比对,将映射质量提高高达 85%,同时将错配减少一半,从而导致与着丝粒相关的峰调用发生显著变化。我们的工作代表了一个概念验证,展示了匹配的参考基因组在多组学分析中的应用,并在规模上为全面组装实验相关细胞系以广泛应用同基因组参考基因组奠定了基础。关键词:人类参考;二倍体基因组;从头组装;基因组参考;着丝粒组装;实验室细胞系;多组学分析;表观遗传学;人类多态性;实验细胞系;同基因组参考。
摘要。尽管近年来取得了进展,急性髓系白血病 (AML) 仍然是一种预后不良的疾病,尤其是对于无法耐受强化化疗的老年 AML 患者。维奈克拉 (VEN) 是一种强效的 BH3 类似物,靶向抗凋亡蛋白 BCL-2,诱导白血病细胞凋亡,已被证明是一种有希望的治疗方法,适用于不适合诱导化疗的新诊断、复发和难治性 AML 患者。使用维奈克拉和低甲基化剂(阿扎胞苷或地西他滨)或低强度化疗的联合治疗在新诊断患者中显示出不同的反应率,对 NPM1、IDH1-IDH2、TET2 和 RUNX1 突变的患者反应性高,对 FLT3、TP53 和 ASXL1 突变、复杂核型和继发性 AML 的患者反应性低。难治性/复发性疾病患者对基于 Venetoclax 的方案反应较差。然而,在大多数患者中,反应仅持续有限时间,并且经常观察到耐药性的产生。因此,了解耐药机制对于制定新策略和确定合理的药物组合方案至关重要。在这种情况下,两种策略似乎很有希望:(i) 基于 Venetoclax、低甲基化剂(或低剂量化疗)和针对白血病细胞特定基因改变的药物(即 FLT3 突变 AML 中的 FLT3 抑制剂)或改变的信号通路的联合给药的三联疗法;(ii) 基于两种 BH3 模拟物(即 BCL-2 +MCL-1 模拟物)和低甲基化剂的给药的联合疗法。关键词:BH3;急性髓系白血病。引文:Pelosi E.、Castelli G.、Testa U. BH3 类似物 Venetoclax 在急性髓系白血病治疗中的作用日益增强。Mediterr J Hematol Infect Dis 2022,14(1): e2022080,DOI:http://dx.doi.org/10.4084/MJHID.2022.080 出版日期:2022 年 11 月 1 日 收到日期:2022 年 9 月 17 日 接受日期:2022 年 10 月 17 日 这是一篇根据知识共享署名许可条款分发的开放获取文章 (https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0),允许在任何媒体中不受限制地使用、分发和复制,前提是对原始作品进行适当的引用。联系人:Ugo Testa。意大利罗马高级卫生研究院肿瘤学系。电子邮箱:ugo.testa@iss.it 简介。细胞凋亡是健康和疾病中的一个重要生物过程,受 BCL-2 家族蛋白的调控。
急性髓样白血病(AML)是一种克隆疾病,是由造血祖细胞中获得的体细胞突变引起的,导致分化失调和造血细胞的增殖[1,2]。积累的证据表明,许多基因组改变,例如染色体重排。基因扩增,缺失和突变对于AML分类至关重要[1-6]。此外,遗传病变的鉴定在AML患者的预后和治疗中起着越来越多的作用[1-4]。下一代测序(NGS)以及全基因组示例(WGS)最近已纳入临床实践,从而使AML患者的风险分层更好。实际上,NGS方法的常规使用已使超过90%的AML患者中一个或多个体细胞突变的鉴定[1-9]。最常见的突变基因包括NPM1,FLT3,DNMT3A,IDH1,IDH2,TET2,RUNX1,TP53,WT1,NRAS,NRAS和CEBPα。然而,在正常的核型AML中,遗传突变的预后预测性显性更为重要[4,10,11]。这些畸变可能有助于确定克隆优势的AML途径和可以帮助血液学家靶向精确医学疗法的转变[7-9]。在过去的几年中,人们对触发AML发展的分子像差以及新型分子生物学技术的使用增加了越来越多的了解,从而促进了针对驱动器基因突变的研究药物的发展[7-9]。基于这种考虑,可以考虑到识别“可药物”突变为使用新型靶向疗法铺平了道路[12]。本期癌症的特刊侧重于用于管理AML的新型诊断和治疗工具,其主要目的是提高我们在AML [10-17]领域的知识。二十年前,发现伊马替尼用于治疗慢性髓样白血病及其出色的活性,这对AML的有针对性疗法产生了类似的好处。在过去的几年中,已经提出了一些血液学恶性肿瘤在内的精确药物,包括急性白血病,在AML中已经确定了100多种不同的靶标,使其成为实验性临床研究的最佳候选者[18-22]。靶向FMS,例如酪氨酸激酶-3(FLT-3),已成为临床可作用突变的第一个例子,使其成为血液学家以及制药和生物技术公司开发新型药物的吸引力[23]。在过去的几年中,在临床试验中已经开发并测试了大量FLT-3靶向药物[24,25]。使用FLT-3靶向化合物的主要考虑因素与以下观点有关,即FLT3基因的内部串联复制(FLT3- ITD-MUT)表征了AML案例的显着数量(25-30%),并且代表了较差的预测因子,而较差的预测因素与增加的风险相关。在批准试验中,将中端龙添加到daunorubucine-和Celtarabine-基于基于daunorubucine的诱导疗法(所谓的“ 3 + 7”方案),从而显着改善了
BCL-2 抑制剂和常规化疗联合治疗急性髓系白血病:从不适合治疗的 AML 患者转变为适合治疗的 AML 患者 Gert Ossenkoppele 医学博士、哲学博士1 和 Paresh Vyas 哲学博士 近 50 年来,蒽环类和阿糖胞苷为基础的强化联合化疗一直是急性髓系白血病 (AML) 患者的主要治疗方法。经典的 7 1 3 组合于 20 世纪 70 年代试行,并于 1981 年作为一项随机研究报告,1 是大多数诱导方案的基础。此后,许多研究测试了柔红霉素和阿糖胞苷的不同剂量和给药方案,2-11 并且添加或替代了干扰 DNA 复制的药物(例如依托泊苷、硫鸟嘌呤、氟达拉滨、氯法拉滨、克拉屈滨)。8,12-15 不幸的是,这些方法迄今为止尚未取得突破性成果,无法获得监管机构的药物批准。然而,情况正在开始改变。研究表明,在强化蒽环类-阿糖胞苷化疗方案中加入靶向疗法可使特定的遗传/生物学 AML 亚组受益。目前一致认为,吉妥珠单抗奥佐米星(一种与细胞毒性抗生素衍生物卡奇霉素连接的人源化鼠抗 CD33 抗体)可提高预后良好且可能为中等风险的 AML 患者的生存率。16-19 同样,多激酶抑制剂米哚妥林(包括 FMS 相关酪氨酸激酶 3,FLT3)在诱导和巩固蒽环类药物-阿糖胞苷组合中添加后,可提高 FLT3 突变型 AML 患者的生存率。20 最后,柔红霉素和阿糖胞苷的脂质体制剂21通过脂质清道夫受体进入细胞,已被证明可以提高继发性和治疗相关 AML 患者的生存率。靶向药物也已被证明对复发/难治性患者有益。22 在这篇社论的随附文章中,Chua 等人23 报告了 CAVEAT 研究的结果,该研究是一项 Ib 期剂量递增试验,研究口服 BCL-2 抑制剂维奈克拉与化疗联合用于新诊断的 AML 患者,这些患者年龄在 65 岁以上,或 60 岁以上,且具有单体核型,适合进行强化化疗。这项研究的重要背景是,在不适合治疗的老年 AML 患者中,将维奈克拉添加到低甲基化药物 (HMA) 或低剂量阿糖胞苷 (LDAC) 中取得了令人印象深刻的结果。在 II 期研究中,维奈克拉与 HMA24 或 LDAC25 联合使用,可将完全缓解 (CR) 和不完全计数恢复的完全缓解 (CRi;CR 1 CRi) 率分别提高至 67% 和 54%,而 HMA26,27 的 CR 率为 24.6% 和 27.8%,LDAC 的 CR 率为 18%。28 这促使美国食品药品管理局批准将维奈克拉-HMA 和维奈克拉-LDAC 用于不适合强化化疗的新诊断 AML 患者。维奈克拉加 LDAC 与 LDAC 加安慰剂的 III 期研究(VIALE-C 研究)现已公布。29 这证实了维奈克拉加 LDAC 的高 CR 1 CRi 率 (48%)。然而,虽然维奈克拉-LDAC 提高了中位总生存期 (OS),但这种增加并不具有统计学意义。维奈克拉-阿扎胞苷与阿扎胞苷加安慰剂 (VIALE-A 研究) 的 III 期数据刚刚以摘要形式在线报告,30 再次证实了接受维奈克拉 HMA 治疗的患者的 CR 1 CRi 率高达 66%,但显示出高度统计学和临床意义的生存期延长,从对照组的 9.6 个月延长至 14.5 个月。鉴于此,基于维奈克拉的联合治疗很可能成为不适合强化化疗的 AML 新诊断患者的新标准治疗方法。鉴于此背景,研究在适合患者的强化 AML 治疗中添加维奈克拉的潜在益处非常及时。一个自然的起点是研究适合强化化疗的老年患者,因为老年患者 AML 的遗传学和生物学差异导致的治疗结果与年轻患者相比较差。CAVEAT 研究报告了 51 名新诊断的 AML 患者的数据,这些患者包括初治患者(28 名患者)或
补充方法 DNA 分离 使用自动 DNA 提取仪按照其协议(chemagic MSM I,PerkinElmer,美国马萨诸塞州沃尔瑟姆)从血液样本中分离 DNA。 使用试剂盒“EZ1&2 DNA Tissue”(Qiagen,德国希尔登)按照协议使用自动 DNA 提取仪 EZ1 Advanced XL(Qiagen)从羊膜细胞和绒毛中分离 DNA。 染色体微阵列(CMA) 使用 SureTaq DNA 标记试剂盒(Agilent,美国加利福尼亚州圣克拉拉)标记 DNA,并根据制造商的说明在 GenetiSure Cyto 4x180K CGH 微阵列(Agilent)上进行杂交。使用 InnoScan 910 AL 扫描仪(Innopsys,Carbonne,法国)扫描载玻片,并使用分析程序 Mapix(Innopsys)和 CytoGenomics 版本 5.1.2.1 和 5.3.0.14(Agilent)进行处理。使用参考基因组 GRCh38 评估数据。染色体分析和荧光原位杂交使用标准方法从肝素血样以及绒毛和羊膜细胞培养物中进行中期制备。简而言之,将来自肝素血样的细胞培养在含有植物血凝素作为有丝分裂原的 LymphoGrow 培养基(CytoGen,Sinn,德国)中,羊膜细胞培养在 Amniogrow plus 培养基(Cytogen,Sinn,德国)中,CVS 细胞培养在 Chang 培养基 D(Fujifilm,Minato,日本)中。固定后,将中期细胞滴到载玻片上,然后在 60 °C 下干燥过夜。使用核型分析系统 Ikaros(MetaSystems,德国阿尔特鲁斯海姆)通过 GTG 显带评估中期染色体的扩散情况。对于 FISH 分析,使用 Empire Genomics(美国纽约州布法罗)的探针 RP11-213E22-green 和 RP11-577D9-orange(7 号染色体)以及 RP11-358H10-green 和 RP11-241M19-orange(16 号染色体)。所有探针均按照制造商的说明使用。使用 Isis 数字成像系统(Metasystem Inc.,德国阿尔特鲁斯海姆)分析图像。 PCR 和测序 在适用的情况下,确认并进一步指定 OGM 分析中的断点,方法是使用 MinION 测序仪(Oxford Nanopore,英国牛津)进行第三代长距离测序,或使用 Hitachi 3500xL 基因分析仪(Thermo Fisher Scientific,美国马萨诸塞州沃尔瑟姆)进行 Sanger 测序。引物是根据 Dremsek et al., 2021 中描述的策略设计的。为了将引物定位得尽可能靠近预期的断点,OGM 数据和 CMA 数据都融入了其设计中。为了分析P1,进行了长距离PCR(连接点B/D*的扩增子:正向引物:5'-ggaggacaattttatcccccaggg-3'和反向引物:5'-gtgagccgtgagtttgccactat-3';连接点D*/B*的扩增子:正向引物:5'-tcgttgacggtgaaatgctacgt-3'和反向引物:5'-gcagataacggagtgaggaaggc-3')。PCR扩增后,使用引物 5' -acagctcactatagcagataggtgt- 3'、5' - ttgcatcaggaacatgtggacct- 3'、5' -ctggtcacaggcgcaaatcaaag- 3'、5' -gtcagcaaaggagagaagcagct- 3' 和 5' - gcaggttggctctttcccaagta- 3' 制备连接点 B/D* 的扩增子(大小为 4 kbp)进行 Sanger 测序。使用引物 5' -agggaaaagagatgtgtaaaatactgt- 3', 5' -agatgaggaagggcatctgac- 3', 5' -tcaagttgtcattgtggtgaatt- 3', 5' - cagatgccagcgctaagacgat- 3', 5' -aggttattacacacccctcct- 3', 5' -tgttcattatcactggccatcaga- 3', 5' -aaggggaaacctcctgctactct- 3', 5' - tgcacccactaacgtgtcatcta- 3', 5' -gggttggttccaagtctttgcta- 3', 5' -gctgaaactggatcccttcctta- 制备连接点 D*/B* 的扩增子(大小为 13 kbp),进行 Sanger 测序。 3'、5' -tgtagggacatggatgaaattgg- 3' 和 5' -ccaaacaccgcatattctcactc- 3'。为了分析 P3,进行了长距离 PCR(正向引物:5' -ttaccacgaaagagcaaacggtga- 3' 和反向引物:5' - aacgttattccttccagtcacccac- 3')。PCR 扩增后,根据制造商的方案(SQK -LSK109,Oxford Nanopore),制备 9 kbp 大小的扩增子以在 MinION 106D 流动槽上进行测序。对于家族检测,建立了 PCR,使用倒位特异性引物 5' -tgcctctgcttaataggaagttttgg- 3' 和 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3'(产生 1247 bp 扩增子),以及野生型引物 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3' 和 5' -ctgttgaaggacacaagctctggc- 3'(产生 778 bp 扩增子)(见 S.3)。MLPA 分析进行多重连接依赖性探针扩增 (MLPA) 以验证在 CMA 中检测到的增益并测试亲属的携带者状态。对于 MLPA,将 DNA 与探针杂交并根据制造商的说明进行扩增。使用 Hitachi 3500xL 基因分析仪(Thermo Fisher)对扩增的 DNA 进行片段分析,并使用 SeqPilot(JSI,德国埃滕海姆)分析程序处理数据。用于所呈现的临床病例的 MLPA 探针组是 P034-B2、P035-B1(P1)和 P216-C1(P3)(MRC-Holland,荷兰阿姆斯特丹)。5' -tgtagggacatggatgaaattgg- 3' 和 5' -ccaaacaccgcatattctcactc- 3'。为了分析 P3,进行了长距离 PCR(正向引物:5' -ttaccacgaaagagcaaacggtga- 3' 和反向引物:5' - aacgttattccttccagtcacccac- 3')。PCR 扩增后,根据制造商的方案(SQK -LSK109,Oxford Nanopore),制备 9 kbp 大小的扩增子以在 MinION 106D 流动池上进行测序。对于家族检测,建立了 PCR,使用倒位特异性引物 5' -tgcctctgcttaataggaagttttgg- 3' 和 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3'(产生 1247 bp 扩增子),以及野生型引物 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3' 和 5' -ctgttgaaggacacaagctctggc- 3'(产生 778 bp 扩增子)(见 S.3)。MLPA 分析进行多重连接依赖性探针扩增 (MLPA) 以验证在 CMA 中检测到的增益并测试亲属的携带者状态。对于 MLPA,将 DNA 与探针杂交并根据制造商的说明进行扩增。使用 Hitachi 3500xL 基因分析仪(Thermo Fisher)对扩增的 DNA 进行片段分析,并使用 SeqPilot(JSI,德国埃滕海姆)分析程序处理数据。用于所呈现的临床病例的 MLPA 探针组是 P034-B2、P035-B1(P1)和 P216-C1(P3)(MRC-Holland,荷兰阿姆斯特丹)。5' -tgtagggacatggatgaaattgg- 3' 和 5' -ccaaacaccgcatattctcactc- 3'。为了分析 P3,进行了长距离 PCR(正向引物:5' -ttaccacgaaagagcaaacggtga- 3' 和反向引物:5' - aacgttattccttccagtcacccac- 3')。PCR 扩增后,根据制造商的方案(SQK -LSK109,Oxford Nanopore),制备 9 kbp 大小的扩增子以在 MinION 106D 流动池上进行测序。对于家族检测,建立了 PCR,使用倒位特异性引物 5' -tgcctctgcttaataggaagttttgg- 3' 和 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3'(产生 1247 bp 扩增子),以及野生型引物 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3' 和 5' -ctgttgaaggacacaagctctggc- 3'(产生 778 bp 扩增子)(见 S.3)。MLPA 分析进行多重连接依赖性探针扩增 (MLPA) 以验证在 CMA 中检测到的增益并测试亲属的携带者状态。对于 MLPA,将 DNA 与探针杂交并根据制造商的说明进行扩增。使用 Hitachi 3500xL 基因分析仪(Thermo Fisher)对扩增的 DNA 进行片段分析,并使用 SeqPilot(JSI,德国埃滕海姆)分析程序处理数据。用于所呈现的临床病例的 MLPA 探针组是 P034-B2、P035-B1(P1)和 P216-C1(P3)(MRC-Holland,荷兰阿姆斯特丹)。