转录后基因沉默 (PTGS) 是了解和控制植物代谢途径的有力工具,是植物生物技术的核心。PTGS 通常通过将小干扰 RNA (siRNA) 递送到细胞中来实现。标准的植物 siRNA 递送方法(农杆菌和病毒)涉及将 siRNA 编码到 DNA 载体中,并且仅适用于某些植物物种。在这里,我们开发了一个基于纳米管的平台,用于直接递送 siRNA,并在完整的植物细胞中显示出高沉默效率。我们证明纳米管成功递送 siRNA 并沉默内源基因,这归功于有效的细胞内递送和纳米管诱导的保护 siRNA 免受核酸酶降解。这项研究表明,纳米管可以实现大量依赖于 RNA 递送到完整细胞的植物生物技术应用。
基因组编辑技术为农业改进提供了巨大的潜力,包括改善消费者健康、提高生产力和缓解日益严重的粮食安全危机。在开发和实施定点核酸酶 (SDN)(尤其是 CRISPR/Cas9)方面取得了快速而令人兴奋的进展。此外,还同时开发了许多新方法,用于将 CRISPR/Cas9 成分递送到植物细胞,从农杆菌感染到纳米颗粒(Chen 等人,2019 年)。然而,由于缺乏用于再生许多作物可育植物的可靠方法,基因组编辑和递送技术的进步仍然超出了我们有效产生编辑事件的能力(Altpeter 等人,2016 年)。从历史上看,即使是低频率恢复转基因植物也被认为是许多作物的重大成功。然而,基因组编辑和递送技术的发展速度远远超过我们有效产生编辑事件的能力。
结合是水平基因转移的主要机制,促进了抗生素耐药性在人类病原体中的传播。它涉及通过称为交配菌毛的细胞外附属物来避免供体和受体细胞之间的连接。在细菌中,结合机制由质粒或转座子编码,通常介导同源移动遗传元件的转移。对古细菌的共轭知之甚少。在这里,我们通过三个共轭pili的冷冻电子显微镜确定原子结构,两种来自高疗法古细菌(Aeropyrum pernix和pyrobaculum calidifontis),另一个由一个由细菌的细菌ti toumefaciial to to to to to to to to to to to to to to toumefacial-to to to to to to to to to to toumefiti。 pili。然而,古细菌共轭机制(称为CED)已被“驯化”,即结合机械的基因编码在染色体上,而不是在移动遗传元素上,并介导细胞DNA的转移。
摘要:西兰花(Brassica Oleracea L. var。Italica)是全球最重要的蔬菜作物之一。由于维生素,花青素,矿物质,纤维,二级代谢产物和其他营养素的丰富性,对西兰花的市场需求仍在增加。著名的二级代谢产物,葡萄糖苷酸盐,磺胺素和硒对癌症具有保护作用。已经在造成重要特征的精细映射和克隆基因中取得了显着进步。这一进展为西兰花育种中标记辅助选择(MAS)的选择奠定了基础。由发达的农杆菌在西兰花中介导的植物的遗传工程有助于提高质量。后期的生活;葡萄糖苷和磺胺含量;以及对昆虫,病原体和非生物胁迫的抵抗力。在这里,我们回顾了西兰花的遗传学和分子育种的最新进展。也讨论了改善西兰花的未来观点。
使用遗传转化方法评估在果树种类中表达的基因的功能是一个漫长的过程,因为这些树木通常是对遗传转化的顽固性,并且在较长的幼年相中不能忍受果实。果实中的瞬时基因表达能够对与果实性状相关的基因进行功能分析,从而加速了果实生理的研究。在这里,通过使用最近开发的“ tsukuba系统”,我们成功地建立了收获的水果组织中有效的瞬态表达系统。“ tsukuba系统”利用了双子病毒复制系统和双终止仪的组合,从而确保了足够的转基因表达水平。我们使用蓝莓水果作为模型来表征该系统在果组织中瞬时表达的适用性。PTKB3- EGFP载体是通过浸润到几种蓝莓品种的水果组织中引入的。我们发现,果实灌注后4-6天,果实中的瞬时GFP荧光。农杆菌悬浮液很容易注入柔软的成熟果实,GFP强烈表达。然而,硬质果实无法通过农业悬浮液渗透,很少检测到GFP。然后,我们测试了开发系统对其他果树的适用性:六个家庭,17种和26种品种。GFP荧光。在蓝莓,鸟莓,甜樱桃,杏子和卫星普通话中,GFP高度表达并以很大一部分的肉体观察到。在Kiwifruit,Hardy Kiwifruits,柿子,桃子,苹果,欧洲梨和葡萄中,GFP荧光仅限于某些部分水果。最后,对蓝莓中的瞬态VCMYBA1过表达进行了测试,作为水果中基因功能分析的模型。瞬态VCMYBA1过表达诱导肉中的红色色素沉着,这表明VCMYBA1表达引起花青素的积累。这项研究为在水果中表达的基因的快速评估提供了技术基础,这对于长期幼年阶段的水果作物的基因功能评估研究非常有用。
基因组编辑技术为农业改进提供了巨大的潜力,包括改善消费者健康、提高生产力和缓解日益严重的粮食安全危机。在开发和实施定点核酸酶 (SDN)(尤其是 CRISPR/Cas9)方面取得了快速而令人兴奋的进展。此外,还同时开发了许多新方法,用于将 CRISPR/Cas9 成分递送到植物细胞,从农杆菌感染到纳米颗粒(Chen 等人,2019 年)。然而,由于缺乏用于再生许多作物可育植物的可靠方法,基因组编辑和递送技术的进步仍然超出了我们有效产生编辑事件的能力(Altpeter 等人,2016 年)。从历史上看,即使是低频率恢复转基因植物也被认为是许多作物的重大成功。然而,基因组编辑和递送技术的发展速度远远超过我们有效产生编辑事件的能力。
基因组编辑技术为农业改进提供了巨大的潜力,包括改善消费者健康、提高生产力和缓解日益严重的粮食安全危机。在开发和实施定点核酸酶 (SDN)(尤其是 CRISPR/Cas9)方面取得了快速而令人兴奋的进展。此外,还同时开发了许多新方法,用于将 CRISPR/Cas9 成分递送到植物细胞,从农杆菌感染到纳米颗粒(Chen 等人,2019 年)。然而,由于缺乏用于再生许多作物可育植物的可靠方法,基因组编辑和递送技术的进步仍然超出了我们有效产生编辑事件的能力(Altpeter 等人,2016 年)。从历史上看,即使是低频率恢复转基因植物也被认为是许多作物的重大成功。然而,基因组编辑和递送技术的发展速度远远超过我们有效产生编辑事件的能力。
葫芦科的水果和蔬菜,如黄瓜、甜瓜、西瓜和南瓜,对人类的饮食贡献巨大。基因组编辑技术的广泛使用大大加速了基因功能表征和作物改良。然而,大多数具有经济价值的葫芦科植物,包括甜瓜和南瓜,仍然难以通过标准的农杆菌介导的转化,限制了基因组编辑技术的有效使用。在本研究中,我们使用“最佳渗透强度”策略建立了一种有效的甜瓜和南瓜遗传转化系统。我们利用这种方法的强大功能来靶向 ERECTA 家族受体激酶基因的同源物,并创建等位基因,从而导致甜瓜、南瓜和黄瓜的植物结构紧凑,节间较短。本文介绍的优化转化方法可实现稳定的 CRISPR/Cas9 介导诱变,并为葫芦科作物的功能性基因操作奠定坚实的基础。
烟草变换。 div>生成转基因线T0。 div>该试验的烟草线对象是由K326商业品种的烟草植物的CRISPR/CAS9技术产生的。 div>为此,由烟草植物的农杆菌根源介导的,具有相应的转化载体,其中包含DSRED和NPTII蛋白的转录单位(选择标记物)(选择标记),CAS9蛋白的转录单位,以及用于辅助辅助的转录单元的转录单位,以辅助构图。 div>
结果:在一个实验中靶向多个基因,通过优化的CRISPR/CAS9系统将112个与植物发育相关的基因拆除。我们优化了合并的SGRNA组装方法的关键步骤,该方法通过该方法将116个SGRNA合并为4组(每组由29个SGRNA组成)。每组SGRNA都是在一个PCR反应中编译的,随后经过一轮矢量构建,转化,SGRNA鉴定以及一轮遗传转化。通过遗传转化介导的农杆菌,我们成功地产生了800多个植物。 对于突变体识别,已经使用了下一代测序技术,结果表明所有产生的植物都是阳性的,并且涵盖了所有靶向基因。 有趣的是,在所有转基因植物中,85%通过遗传转化介导的农杆菌,我们成功地产生了800多个植物。对于突变体识别,已经使用了下一代测序技术,结果表明所有产生的植物都是阳性的,并且涵盖了所有靶向基因。有趣的是,在所有转基因植物中,85%
