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完全隔离和隔离程序...
阿肯色大学的员工可能会申请高达80个小时的带薪休假（根据其工作时间表为兼职员工提供的份额），以申请COVID-19相关疾病，隔离和托儿服务。只有2020年家庭第一冠状病毒反应法（FFCRA）分配的全部80小时的员工，他们无法在校园或家中工作，可能有资格在2021年获得Covid-19。适用其他限制。如果您认为您可能有资格参加Covid-19，请通过hrassist@uark.edu或575-4044与HR Assist联系。
2007 年隔离预防措施指南
《隔离预防措施指南：预防医疗环境中传染性病原体传播 2007》更新并扩展了《1996 年医院隔离预防措施指南》。以下发展导致了对 1996 年指南的修订：1. 医疗保健服务从主要的急症护理医院向其他医疗保健环境（例如家庭护理、门诊护理、独立专科护理站点、长期护理）的转变需要制定可应用于所有医疗保健环境的建议，这些建议采用通用的感染控制实践原则，但可根据特定环境的需求进行修改。因此，修订后的指南涉及各种医疗保健服务环境。此外，“院内感染”一词被“医疗相关感染”（HAI）取代，以反映医疗保健服务模式的变化和确定接触传染性病原体和/或感染地理位置的难度。 2. 新病原体的出现（例如与严重急性呼吸综合征 [SARS] 相关的 SARS-CoV、人类禽流感）、对已知病原体进化的再度关注（例如艰难梭菌、诺如病毒、社区相关耐甲氧西林金黄色葡萄球菌 [CA-MRSA]）、新疗法的开发（例如基因疗法）以及对生物武器袭击威胁的日益关注，表明需要解决比以前的隔离指南更广泛的问题。 3. 1996 年指南中首次推荐的标准预防措施的成功经验使人们再次确认这种方法是预防所有医疗环境中传染源传播的基础。标准预防措施建议中新增了呼吸卫生/咳嗽礼仪和安全注射规范，包括在进行某些涉及脊髓管穿刺的高风险、长时间手术（例如脊髓造影、硬膜外麻醉）时佩戴口罩。需要对呼吸卫生/咳嗽礼仪提出建议，这源于 SARS 爆发期间的观察，当时未能对有呼吸道症状的患者、访客和医护人员实施简单的源头控制措施，可能导致 SARS 冠状病毒 (SARS-CoV) 传播。建议的做法有强有力的证据基础。门诊环境中乙肝和丙肝病毒的持续爆发表明，需要重申安全注射实践建议作为标准预防措施的一部分。最近有证据表明，某些脊柱注射与呼吸道菌群引起的脑膜炎相关，因此增加了口罩。4.越来越多的证据表明，环境控制可降低最严重免疫功能低下患者（异基因造血干细胞移植患者）发生危及生命的真菌感染的风险，这导致了对保护环境 (PE) 组成部分的更新。5. 有证据表明，组织特征（例如，护士人员配备水平和组成、安全文化的建立）会影响医护人员遵守推荐的感染控制措施，因此是预防传染源传播的重要因素，这导致了对行政部门参与感染控制计划的制定和支持的新重视和建议。
ECM-VB1噬菌体的隔离和表征...
通过椎间盘扩散法确定了大肠杆菌分离株对不同抗生素的敏感性，如表1所示。数据表明，大肠杆菌分离株中有7.7％（5/65）对前苯甲苯具有抗性，分离株中有9.2％（6/65）对硝基氟耐药有抗性，分离株的21.5％（14/65）是对氯苯二甲酸的耐药性，47.7.7％（31/65）的抗性抗性（31/65）。 53.8％（35/65）的分离株对哌拉西林 - tazobactam有抵抗力，分离株的67.6％（44/65）对三甲氧苄啶甲基甲氧唑抗性，分离株的70.7％（46/65）是脱离了81.5％（53/65 ep）的分离株（46/65）。分离株的95.4％（62/65）是头孢唑啉和头孢曲松抗性，97％（63/65）的分离株对环丙沙星具有抗性，最后，头孢二胺，阿莫替辛和阿莫克西林 - 克拉氨酸盐和阿莫克西林 - 克氨酸酯均未对100％（65/65/65/65/65）的有效有效。所有65个分离株均为MDR。
隔离和鉴定生物膜形成细菌
摘要：在这项研究中，针对AydınProvince在露天市场摊位上出售的各种食品形成生物膜的细菌的隔离和鉴定是针对的。细菌，并在37°C的胰蛋白酶大豆琼脂培养基中孵育24-48小时。进行了分离的细菌的DNA分离，并将获得的PCR产物用于测序。刚果红琼脂方法用于定性分析生物膜形成。根据这种方法，将形成黑色菌落的细菌评估为生物膜阳性，并使用微板法进行定量分析。从采样食品中分离出67种细菌，其中7种是强的，其中2种是中等生物膜生产者，表明应更重要的是食物卫生。
生物膜形成的隔离和表征
本研究的目的是研究从零售商店收集的生鸡肉样品中的大肠杆菌（E.coli）的存在，以及现场分离株的生物膜形成能力，并表征不同的粘附基因。在20个鸡肉样品中，有17个（85％）为大肠杆菌阳性。15个大肠杆菌菌株，所有分离株都是阳性的，证实了所有分离株都是大肠杆菌。在经过生物膜形成测定的15个确认的大肠杆菌野外分离株中，发现其中46％是强生生物膜生产者。虽然将所有分离株筛选为存在粘附基因的存在。Luxs，CSGA，FIMH，FIMA和PAPC，在所有菌株中都检测到粘附基因luxs（100％）。分别在93％，93％和73％的分离株中检测到其他粘附基因CSGA，FIMH和FIMA。仅在四个菌株中检测到大肠杆菌场分离株，筛选了布拉特姆基因，该菌株被分类在强生物膜生产者下。这项研究证明了生物膜在生鸡肉样品中形成大肠杆菌作为污染物，从而导致变质并可能对消费者的健康和安全构成风险。
传感器故障检测、隔离和调节...
摘要 — 传感器技术通过将现场和实时原始数据集成到数字孪生中来赋能工业 4.0。然而，由于固有问题和/或环境条件，传感器可能不可靠。本文旨在检测传感器测量中的异常，识别故障数据并用适当的估计数据进行调整，从而为可靠的数字孪生铺平道路。更具体地说，我们提出了一种基于机器学习的通用传感器验证架构，该架构基于一系列神经网络估计器和分类器。估计器对应于所有不可靠传感器的虚拟传感器（用于重建正常行为并替换系统内孤立的故障传感器），而分类器用于检测和隔离任务。对三个不同的真实世界数据集进行了全面的统计分析，并在硬和软合成故障下验证了所提出的架构的性能。
塑料的分离、特性和鉴定...
塑料污染是当今普遍存在的问题，亟待解决。能够降解塑料的微生物可能是解决这一问题的关键，因为它们能提供有关塑料降解的遗传和代谢途径的知识。在这项研究中，我们从内格罗斯省西巴戈市的卫生垃圾填埋场采集土壤样本，以分离能够降解塑料污染物的细菌。60 天内，5 种细菌分离株在基本培养基中与紫外线和高压灭菌 (AC) 灭菌的 PET 薄膜碎片一起培养。60 天后，薄膜还原分析表明，与未接种的对照 PET 薄膜相比，分离株 PT1 显著降解了 9.29% 的紫外线处理 PET 薄膜。通过分子和生化表征，该分离株被鉴定为 Rhodococcus gordoniae PT1。其他在以塑料为唯一碳源的极限培养基中生长的细菌分离株被鉴定为吴侯不动杆菌、波希米克不动杆菌和红色链霉菌。扫描电子显微镜分析显示，接种细菌的薄膜出现了裂缝和孔洞等结构变化，表明塑料降解了。这些细菌降解塑料的能力为生物修复、绿色化学和生物工程奠定了基础，为消除环境中的顽固污染物提供了潜在的解决方案。然而，在将这些细菌用于生物修复和生物工程之前，需要仔细考虑某些分离株的潜在致病性。最后，这是首次在西内格罗斯省勃固市鉴定塑料降解细菌的研究，也是首次描述已鉴定物种的塑料降解潜力的研究。
磷酸盐的分离、评价和表征...
磷是一种矿物质，主要以固体形式存在于土壤中，植物不易吸收和利用。这是因为它与土壤中的其他元素形成了强键，形成了一种不易溶于水的化合物。因此，磷溶性微量元素作为改善植物缺磷的替代解决方案长期以来被研究。这项研究的重点是评估这些微量营养素对大豆生产的有效性，因为埃塞俄比亚存在大面积酸性土壤，所以植物不易吸收磷。为了进行这项研究，我们在实验室中从大豆根部土壤中分离出五种磷溶性微量元素。人们已经研究了这些微量元素溶解与钙、铁和铝形成化合物的磷的能力。此外，利用特定的基因片段（16S-23S rRNA 区域）来识别微生物的种类。目前已在田间六个地点研究了这些微量营养素产量的潜在增长。研究证实该微量元素具有从钙、铁、铝化合物中除去磷的作用。另外，在研究微生物的遗传学时，发现1种属于假单胞菌属微生物，4种属于芽孢杆菌属。田间产量评估研究表明，在已鉴定的微生物中，假单胞菌属微生物（指定为 EPS1）与固氮微生物（慢生根瘤菌，MAR 1495）可使大豆产量平均提高 17.2%。这比我们将推荐量的一半磷与上述富氮肥料混合所获得的产量增加还要多。这项研究表明，应选择并充分研究磷溶性微量营养素，以提高植物对磷的利用率。
补充方法 DNA 分离 ...
补充方法 DNA 分离 使用自动 DNA 提取仪按照其协议（chemagic MSM I，PerkinElmer，美国马萨诸塞州沃尔瑟姆）从血液样本中分离 DNA。 使用试剂盒“EZ1&2 DNA Tissue”（Qiagen，德国希尔登）按照协议使用自动 DNA 提取仪 EZ1 Advanced XL（Qiagen）从羊膜细胞和绒毛中分离 DNA。 染色体微阵列（CMA） 使用 SureTaq DNA 标记试剂盒（Agilent，美国加利福尼亚州圣克拉拉）标记 DNA，并根据制造商的说明在 GenetiSure Cyto 4x180K CGH 微阵列（Agilent）上进行杂交。使用 InnoScan 910 AL 扫描仪（Innopsys，Carbonne，法国）扫描载玻片，并使用分析程序 Mapix（Innopsys）和 CytoGenomics 版本 5.1.2.1 和 5.3.0.14（Agilent）进行处理。使用参考基因组 GRCh38 评估数据。染色体分析和荧光原位杂交使用标准方法从肝素血样以及绒毛和羊膜细胞培养物中进行中期制备。简而言之，将来自肝素血样的细胞培养在含有植物血凝素作为有丝分裂原的 LymphoGrow 培养基（CytoGen，Sinn，德国）中，羊膜细胞培养在 Amniogrow plus 培养基（Cytogen，Sinn，德国）中，CVS 细胞培养在 Chang 培养基 D（Fujifilm，Minato，日本）中。固定后，将中期细胞滴到载玻片上，然后在 60 °C 下干燥过夜。使用核型分析系统 Ikaros（MetaSystems，德国阿尔特鲁斯海姆）通过 GTG 显带评估中期染色体的扩散情况。对于 FISH 分析，使用 Empire Genomics（美国纽约州布法罗）的探针 RP11-213E22-green 和 RP11-577D9-orange（7 号染色体）以及 RP11-358H10-green 和 RP11-241M19-orange（16 号染色体）。所有探针均按照制造商的说明使用。使用 Isis 数字成像系统（Metasystem Inc.，德国阿尔特鲁斯海姆）分析图像。 PCR 和测序 在适用的情况下，确认并进一步指定 OGM 分析中的断点，方法是使用 MinION 测序仪（Oxford Nanopore，英国牛津）进行第三代长距离测序，或使用 Hitachi 3500xL 基因分析仪（Thermo Fisher Scientific，美国马萨诸塞州沃尔瑟姆）进行 Sanger 测序。引物是根据 Dremsek et al., 2021 中描述的策略设计的。为了将引物定位得尽可能靠近预期的断点，OGM 数据和 CMA 数据都融入了其设计中。为了分析P1，进行了长距离PCR（连接点B/D*的扩增子：正向引物：5'-ggaggacaattttatcccccaggg-3'和反向引物：5'-gtgagccgtgagtttgccactat-3'；连接点D*/B*的扩增子：正向引物：5'-tcgttgacggtgaaatgctacgt-3'和反向引物：5'-gcagataacggagtgaggaaggc-3'）。PCR扩增后，使用引物 5' -acagctcactatagcagataggtgt- 3'、5' - ttgcatcaggaacatgtggacct- 3'、5' -ctggtcacaggcgcaaatcaaag- 3'、5' -gtcagcaaaggagagaagcagct- 3' 和 5' - gcaggttggctctttcccaagta- 3' 制备连接点 B/D* 的扩增子（大小为 4 kbp）进行 Sanger 测序。使用引物 5' -agggaaaagagatgtgtaaaatactgt- 3', 5' -agatgaggaagggcatctgac- 3', 5' -tcaagttgtcattgtggtgaatt- 3', 5' - cagatgccagcgctaagacgat- 3', 5' -aggttattacacacccctcct- 3', 5' -tgttcattatcactggccatcaga- 3', 5' -aaggggaaacctcctgctactct- 3', 5' - tgcacccactaacgtgtcatcta- 3', 5' -gggttggttccaagtctttgcta- 3', 5' -gctgaaactggatcccttcctta- 制备连接点 D*/B* 的扩增子（大小为 13 kbp），进行 Sanger 测序。 3'、5' -tgtagggacatggatgaaattgg- 3' 和 5' -ccaaacaccgcatattctcactc- 3'。为了分析 P3，进行了长距离 PCR（正向引物：5' -ttaccacgaaagagcaaacggtga- 3' 和反向引物：5' - aacgttattccttccagtcacccac- 3'）。PCR 扩增后，根据制造商的方案（SQK -LSK109，Oxford Nanopore），制备 9 kbp 大小的扩增子以在 MinION 106D 流动槽上进行测序。对于家族检测，建立了 PCR，使用倒位特异性引物 5' -tgcctctgcttaataggaagttttgg- 3' 和 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3'（产生 1247 bp 扩增子），以及野生型引物 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3' 和 5' -ctgttgaaggacacaagctctggc- 3'（产生 778 bp 扩增子）（见 S.3）。MLPA 分析进行多重连接依赖性探针扩增 (MLPA) 以验证在 CMA 中检测到的增益并测试亲属的携带者状态。对于 MLPA，将 DNA 与探针杂交并根据制造商的说明进行扩增。使用 Hitachi 3500xL 基因分析仪（Thermo Fisher）对扩增的 DNA 进行片段分析，并使用 SeqPilot（JSI，德国埃滕海姆）分析程序处理数据。用于所呈现的临床病例的 MLPA 探针组是 P034-B2、P035-B1（P1）和 P216-C1（P3）（MRC-Holland，荷兰阿姆斯特丹）。5' -tgtagggacatggatgaaattgg- 3' 和 5' -ccaaacaccgcatattctcactc- 3'。为了分析 P3，进行了长距离 PCR（正向引物：5' -ttaccacgaaagagcaaacggtga- 3' 和反向引物：5' - aacgttattccttccagtcacccac- 3'）。PCR 扩增后，根据制造商的方案（SQK -LSK109，Oxford Nanopore），制备 9 kbp 大小的扩增子以在 MinION 106D 流动池上进行测序。对于家族检测，建立了 PCR，使用倒位特异性引物 5' -tgcctctgcttaataggaagttttgg- 3' 和 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3'（产生 1247 bp 扩增子），以及野生型引物 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3' 和 5' -ctgttgaaggacacaagctctggc- 3'（产生 778 bp 扩增子）（见 S.3）。MLPA 分析进行多重连接依赖性探针扩增 (MLPA) 以验证在 CMA 中检测到的增益并测试亲属的携带者状态。对于 MLPA，将 DNA 与探针杂交并根据制造商的说明进行扩增。使用 Hitachi 3500xL 基因分析仪（Thermo Fisher）对扩增的 DNA 进行片段分析，并使用 SeqPilot（JSI，德国埃滕海姆）分析程序处理数据。用于所呈现的临床病例的 MLPA 探针组是 P034-B2、P035-B1（P1）和 P216-C1（P3）（MRC-Holland，荷兰阿姆斯特丹）。5' -tgtagggacatggatgaaattgg- 3' 和 5' -ccaaacaccgcatattctcactc- 3'。为了分析 P3，进行了长距离 PCR（正向引物：5' -ttaccacgaaagagcaaacggtga- 3' 和反向引物：5' - aacgttattccttccagtcacccac- 3'）。PCR 扩增后，根据制造商的方案（SQK -LSK109，Oxford Nanopore），制备 9 kbp 大小的扩增子以在 MinION 106D 流动池上进行测序。对于家族检测，建立了 PCR，使用倒位特异性引物 5' -tgcctctgcttaataggaagttttgg- 3' 和 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3'（产生 1247 bp 扩增子），以及野生型引物 5' - cagccaataacgtgagtttaggagt- 3' 和 5' -ctgttgaaggacacaagctctggc- 3'（产生 778 bp 扩增子）（见 S.3）。MLPA 分析进行多重连接依赖性探针扩增 (MLPA) 以验证在 CMA 中检测到的增益并测试亲属的携带者状态。对于 MLPA，将 DNA 与探针杂交并根据制造商的说明进行扩增。使用 Hitachi 3500xL 基因分析仪（Thermo Fisher）对扩增的 DNA 进行片段分析，并使用 SeqPilot（JSI，德国埃滕海姆）分析程序处理数据。用于所呈现的临床病例的 MLPA 探针组是 P034-B2、P035-B1（P1）和 P216-C1（P3）（MRC-Holland，荷兰阿姆斯特丹）。