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使用 Edit-R 试剂在 iPSC 中敲入 SNP 改变。
图 2：使用核转染提供的 Cas9-mRNA 核酸酶、合成 sgRNA 和 ssDNA 寡核苷酸修复模板对 iPSC 进行基因编辑不会对 iPSC 形态造成干扰，可用于对基因组进行微小改变。A) 核转染后 48 小时拍摄的相位图像。比例尺为 100 μm。BC) 分析 LMNA 基因座 (B) 和 MYH7 基因座 (C) 中具有指定所需编辑 (蓝色) 或不需要的 INDEL (灰色) 的总 NGS 测序读数百分比。
干细胞研究
根据全基因组关联研究 (GWAS)，许多基因位点与 2 型糖尿病患病率相关。其中，位于人类染色体 9P21.3 区域的 INK4 基因位点编码一个细胞周期依赖性激酶抑制剂家族（称为 p16 INK4a、p15 INK4b 和 p14 ARF），可抑制细胞周期依赖性激酶 CDK4 和 6。此外，一个名为 ANRIL 的非编码 RNA 位于该基因位点内，与其他三个基因相比，其转录方向相反（图 1 A）（Cunnington 等人，2010 年；Popov 和 Gil，2010 年）。重要的是，INK4 基因座含有六个与 T2D 相关的单核苷酸多态性 (SNP)，称为 rs2383208、rs10965250、rs10811661、rs10757283、rs1333051 和 rs7018475，位于 ANRIL 基因下游 8 kb 基因组区块 (INK4 T2D 风险区域) 中 (图 1 A) (Pasmant 等人，2010)。然而，这些 SNP 是否与 T2D 有因果关系以及它们如何调节 INK4 基因座尚不清楚。为了提供一种能够对 INK4 基因座的 T2D 关联 SNP 进行功能分析的工具，我们旨在生成缺少此 INK4 -T2D 风险区域的两个等位基因（纯合或双等位基因缺失）的 hiPSC 系。为此，我们使用我们最近建立的 hiPSC 系 (HMGUi001-A-1) (Wang et al., 2018) 通过 CRISPR/Cas9 基因组编辑系统进行基因靶向。由于靶向的是低保守性非编码 DNA，因此首先对 INK4 -T2D 风险区域上游（A 区域）和下游（B 区域）的 CRISPR 靶位点进行测序。然后，设计两组正向和反向引物（FA、RA；FB、RB）用于扩增 sgRNA 位点的边界区域（两个双链断裂）。接下来，设计具有高特异性得分的单向导RNA（sgRNA1和sgRNA2），并将其克隆到CRISPR表达载体中。通过Gibson组装克隆，我们生成了双sgRNA CRISPR/Cas9-GFP载体，
补充材料
图 S2。反式配对切口方法导致人类 HSPC 中的 HDR 效率低下。(A) 使用 CRISPR/Cas9、单切口或反式配对切口方法在 HEK293T 细胞中将 T2A-mCherry 插入人类 B2M 基因座的靶向策略。使用没有 (pDonor) 或有 2 个靶序列 (TS) (pDonor-Nick 2) 的供体质粒。靶向 B2M 的常见 sgRNA 以红色表示。使用所示方法靶向 B2M 基因座六天后，对 mCherry + HEK293T 细胞的百分比进行 FACS 分析。图表总结了通过 FACS 测量的 mCherry + (HDR) HEK293T 细胞的频率。(B) 使用 CRISPR/Cas9、单切口或反式配对切口方法在人类 HSPC 中将 T2A- mCherry 插入人类 B2M 基因座。使用单链 (ss) AAV 和不含 (scAAV) 或含 2 个 TS 的自互补 (sc) AAV (scAAV-Nick 2 ) 作为供体模板。FACS 分析显示靶向三天后 mCherry + HSPC 的频率。条形图显示 HDR (mCherry + ) 效率。数据显示为四次独立实验的平均值 ± SD。
人工智能和机器人意识对酒店业员工创造力的影响
目前关于人工智能和机器人意识 (AIRA) 的文献主要关注 AIRA 的阴暗面。因此，本研究通过探索酒店员工如何以及何时在面对人工智能和机器人威胁时采取主动行为以进一步激发创造力，揭示了 AIRA 对员工创造力的积极影响。基于工作调整理论 (TWA) 和控制点理论，本研究构建了一个调节多重中介模型来解释 AIRA 对员工创造力的影响，其中主动学习和任务制定被用作中介变量，控制点被用作调节变量。从一家中国酒店收集的 264 名员工的数据用于实证分析。结果表明：(a) AIRA 通过主动学习和任务制定间接地对员工创造力产生积极影响；(b) 控制点不仅调节主动学习在 AIRA 与员工创造力关系之间的中介作用，而且调节任务制定在 AIRA 与员工创造力关系之间的中介作用。讨论了理论和实践意义。
Michael Haude博士博士出生日期和地点 siRNA和ASO Therapeutics的功效和安全性 schiattarella_cv_hfa选举
结论：由LP（A）水平介导的LPA基因座的遗传变异与多个种族的主动脉瓣钙化有关，并且与入口临床主动脉狭窄。
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CRISPR/CAS9基因组编辑用于破坏HeLa细胞中的CXCR4基因座。CXCR4编码与CXCL12趋化因子相互作用的细胞表面趋化因子受体，并在免疫系统中起重要作用。在本实验中，使用指南IT SGRNA筛选试剂盒测试了针对CXCR4基因座的四个不同的SGRNA。简要地，使用指南SGRNA在体外转录试剂盒中合成了针对CXCR4基因的SGRNA。一个包含SGRNA靶序列的PCR片段与重组Cas9蛋白和每个SGRNA混合。通过琼脂糖凝胶电泳分析裂解反应。光密度法（Cong等，2013）表明SGRNA3的裂解效率最低（图2）。
CRISPR/CAS9 基因编辑系统
CRISPR 基因座（源自英文“Clustered Regularly Interspaced Palindromic Repeats”，缩写为 CRISPR）于 1987 年由 Ishino 及其同事首次描述，当时他们正在研究大肠杆菌中参与碱性磷酸酶同工酶相互转化的 iap 基因。当时，由于DNA序列数据不足，技术也不像今天先进，研究人员无法预测这些序列的生物学功能。1993 年，CRISPR 基因座也在古菌（Haloferax mediterranei）中被观察到，随后在许多其他细菌的基因组中也被证实。在两个生命领域中同一基因位点的保存表明该区域很可能具有一定的重要性。然而，直到 2005 年，Mojica 及其合作者以及 Pourcel 及其合作者才独立报道间隔区中包含的序列与噬菌体、原噬菌体和质粒中发现的序列同源。以此方式证明，外源生物无法感染在 CRISPR 基因座中具有与
智能创新者：ESG与可持续性报告和数据管理软件（2025）
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使用内源性 U6 snRNA 启动子驱动的 CRISPR/Cas9 sgRNA 在核盘菌中进行有效的基因组编辑
我们之前报道了一种针对死体营养真菌植物病原菌核病菌的 CRISPR-Cas9 基因组编辑系统。该系统（TrpC-sgRNA 系统）基于 RNA 聚合酶 II（RNA Pol II）启动子（TrpC）在体内驱动 sgRNA 转录，成功创建了基因插入突变体。然而，相对低效率的靶向基因编辑阻碍了该方法在核病菌功能基因组研究中的应用。为了进一步优化 CRISPR-Cas9 系统，建立并评估了无质粒的 Cas9 蛋白/sgRNA 核糖核蛋白（RNP）介导的系统（RNP 系统）和基于质粒的 RNA 聚合酶 III 启动子（U6）驱动的 sgRNA 转录系统（U6-sgRNA 系统）。本研究针对之前鉴定的草酰乙酸乙酰水解酶 (Ssoah1) 基因座和一个编码聚酮化合物合酶 12 (Sspks12) 的新基因座创建了功能丧失突变体。RNP 系统与我们之前报道的 TrpC-sgRNA 系统类似，可以在 Ssoah1 基因座上以类似的效率产生突变。然而，这两个系统都未能在 Sspks12 基因座上成功产生突变。U6-sgRNA 系统在这两个基因座上都表现出明显更高的基因突变效率。该技术为靶向基因突变提供了一种简单有效的策略，从而将加快对这种具有重要经济价值的植物病原体的致病性和发展的研究步伐。
聚合酶θ缺陷型拟南芥的基因靶向
几十年来，农杆菌介导的转化一直是生成转基因植物的首选工具。在此过程中，携带转基因的 T-DNA 从细菌转移到植物细胞中，在那里它通过聚合酶θ (Pol h ) 介导的末端连接 (TMEJ) 随机整合到基因组中。通过同源重组 (HR) 将 T-DNA 靶向到特定基因组位点也是可能的，但此类基因靶向 (GT) 事件发生的频率很低，并且几乎总是伴随着随机整合事件。另一个复杂因素是，T-DNA 和目标位点重组的产物可能不仅映射到目标位点 (真正的 GT)，还可能映射到基因组中的随机位置 (异位 GT)。在本研究中，我们通过使用突变了 TEBICHI 基因（该基因编码 Pol h ）的拟南芥，研究了 TMEJ 功能如何影响植物中 GT 的生物学。在 TMEJ 功能强大的植物中，我们主要发现 GT 事件伴随着随机的 T-DNA 整合，而在 teb 突变体背景下获得的 GT 事件缺乏额外的 T-DNA 拷贝，证实了 Pol h 在 T-DNA 整合中的重要作用。Pol h 缺乏也会阻止异位 GT 事件，这表明导致此结果的事件序列需要 TMEJ。我们的研究结果提供了可用于制定在农作物中获得高质量 GT 事件的策略的见解。