ProTac HL 5-X 是一款高功率、多燃料战术灯,使用两个受 SL-B26® 保护的锂离子 USB 充电电池组或四个 CR123A 电池。多电池多功能性意味着,如果充电电池组没电且没有充电源,您可以使用一次性电池为灯供电。配有“稳固抓握”橡胶套并附带挂绳。
ROTAC(蛋白水解靶向嵌合体),以下通常称为降解剂,是一种异双功能分子,能够诱导 E3 连接酶介导的泛素化并随后降解目标蛋白(目的蛋白或 POI)。其非常规的催化作用方式和相关优势使 PROTAC 成为一种新的治疗方式,引起了人们对药物发现的极大兴趣。1、2 PROTAC 除了能够靶向耐药癌症形式外,还具有针对无法用药的靶标的潜力,例如通常参与蛋白质-蛋白质相互作用 (PPI) 的浅表面蛋白质,甚至支架蛋白,3、4 引起了制药/生物技术行业和学术界的兴趣。5、6 值得注意的是,PROTAC 具有大而灵活的结构,这在同时优化溶解度和细胞通透性方面带来了显著的挑战。具体而言,通过增强亲脂性来追求增加渗透性可能会导致溶解度和代谢稳定性降低。7、8
Zeng, M.、Xiong, Y.、Safaee, N.、Nowak, RP、Donovan, KA、Yuan, CJ, ... & Gray, NS (2020)。探索致癌 KRASG12C 的靶向降解策略。细胞化学生物学,27(1),19-31。
PROTAC 已成为一类新型药物,它可以通过劫持泛素蛋白酶体系统来靶向“不可成药”的蛋白质组。尽管 PROTAC 取得了成功,但目前大多数 PROTAC 都与有限数量的 E3 连接酶相互作用,阻碍了它们扩展到许多具有挑战性的治疗用途。目前,PROTAC 药物发现严重依赖于传统的蛋白质印迹和报告基因检测,这两种方法分别不敏感且容易出现伪影。无需外部标签即可监测 PROTAC 的真实功能(即靶标在生理表达水平上的泛素化和随后的降解)的新型可靠方法对于加速 PROTAC 发现过程和解决许多未满足的治疗领域至关重要。在本研究中,我们开发了一种新的高通量筛选技术,使用“TUBE”作为泛素结合实体,以出色的灵敏度监测 PROTAC 介导的天然靶蛋白多泛素化。作为概念验证,包括 BRD3、Aurora A 激酶和 KRAS 在内的靶标被用于证明泛素化动力学可以可靠地确定具有可变配体和接头的 PROTAC 的等级效力。PROTAC 处理的细胞裂解物具有最高水平的内源性靶蛋白泛素化 - 称为“Ub Max” - 与从传统蛋白质印迹获得的 DC 50 值显示出极好的相关性,并具有高通量、提供更高的灵敏度和减少技术错误的额外优势。© 2022 作者。由 Elsevier Inc. 出版。这是一篇根据 CC BY-NC-ND 许可开放获取的文章(http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/)。
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近年来,靶向嵌合体(Protac)技术的蛋白水解已成为通过利用细胞自己的破坏机制来清除与疾病相关蛋白质的最有希望的方法之一。要获得感兴趣的蛋白质(POI)的成功降解,杂功能的Protac分子必须首先穿透到细胞中,然后靶向靶标和POI-PROTAC-E3连接酶复合物的靶标和形成。基于这种理解,对细胞渗透性和细胞靶标的评估评估对于评估Protac候选物的疗效至关重要。Protac分子可以分类为非共价和共价,并且可以将共价Protac进一步分为不可逆的和可逆的共价。在这里,我们提出了一个高通量测定法,以使用激酶结合测定和纳米伯特目标参与平台定量测量其细胞内积累来确定不同类型的BTK Protac。
蛋白水解靶向嵌合体 (PROTAC) 是一种用于潜在临床药物发现的新型靶向蛋白质降解技术,由蛋白质靶向配体与 E3 连接酶配体共价连接而成。通过招募 E3 连接酶到靶蛋白,PROTAC 通过泛素-蛋白酶体系统引发泛素化并随后降解靶标。在过去的几十年中,分子对接和虚拟筛选已经成为一种有效的药物发现策略,用于从大量化学结构数据库中识别化合物。对于 PROTAC,分子对接可以准确模拟蛋白质-PROTAC-E3 三元复合物,从而大大加速构效关系分析,并提高配体的亲和力和选择性。在本综述中,我们总结了分子对接和虚拟筛选在 PROTAC 药物发现中的应用的最新进展。迄今为止,已有大约 9 种靶蛋白和 12 种 PROTAC 成功通过分子对接和虚拟筛选开发。最后,讨论了分子对接和基于虚拟筛选的 PROTAC 的潜在挑战。
2010年,Itoh等人利用甲基乌苯美司合成了另一种PROTAC分子,以募集E3连接酶(凋亡蛋白抑制剂(IAP))来降解POI。为了提高效力和靶标选择性,具有高亲和力和特异性的小分子(例如,募集E3连接酶cereblon(CRBN)的邻苯二甲酰亚胺或识别E3连接酶Von Hippel-Lindau(VHL)的VHL-1)进入PROTAC分子,进而下调多种癌症靶标,例如Ikaros家族锌指蛋白1/3(IKZF1/3)和雌激素相关受体α(ERRα)。基于小分子的PROTAC的突破为PROTAC作为癌症治疗策略开辟了一条新道路。
蛋白水解靶向嵌合体 (PROTAC) 是异双功能分子,由两个配体组成;一个与 E3 泛素连接酶结合的“锚”和一个与目标蛋白结合的“弹头”,两者通过化学接头连接。PROTAC 靶向降解蛋白质已成为一种新的敲除一系列蛋白质的方式,首批药物目前已进入临床评估阶段。越来越明显的是,接头的长度和组成对 PROTAC 的物理化学性质和生物活性起着关键作用。虽然接头设计在历史上受到的关注有限,但 PROTAC 领域正在迅速发展,目前正在经历从易于合成的烷基和聚乙二醇到更复杂的功能接头的重要转变。这有望解锁大量具有增强生物活性的新型 PROTAC 药物,用于治疗干预。在这里,作者及时概述了已发表文献中的各种接头类别,以及它们的基本设计原则和对相关 PROTAC 的性质和生物活性的总体影响。最后,作者对 PROTAC 组装的当前策略进行了批判性分析。作者强调了与接头设计和选择相关的传统“反复试验”方法的重要局限性,并提出了未来的潜在途径,以进一步指导合理的接头设计并加速优化 PROTAC 的识别。特别是,作者认为计算和结构方法的进步将在更好地理解 PROTAC 三元复合物的结构和动力学方面发挥重要作用,并且对于解决与 PROTAC 设计相关的当前知识空白至关重要。
C-SRC激酶Wuxiang Mao的选择性和有效的Protac Degrader,Nathalie M. Vandecan,Christopher R. Bingham,A Pui Ki Tsang,A Peter Ulintz,Brache ulintz,B Rachel Sexton,Daniel A. Bochar,Daniel A. Bochar,A Sofia D. Merajver,A Sofia D. Merajver,b and b and Matthew B.Softhew B. suellner*seellner*a。密歇根大学化学系,密歇根州安阿伯市930 N. University Ave.,48109。b。 密歇根大学内科系,1500 E. Medical Ave.,Ann Arbor,MI 48109。 使用链接到E3连接酶配体的dasatinib的摘要,我们确定了有效的双CSK/C-SRC Protac Degrader。 然后,我们用构象选择性类似物代替了dasatinib,稳定c-shelix c-Src的构象。 使用A c螺旋外配体,我们确定了一种对C-SRC有效且有选择性的Protac。 使用我们的C-SRC Protac,我们确定了与癌细胞增殖相比,C-SRC降解的药理优势。 引言蛋白激酶(PKS)在细胞信号传导和调节关键生物学过程(包括增殖,分化和凋亡)中起着至关重要的作用[1-3]。 对于许多激酶,对基因组敲低(例如siRNA)与激酶抑制剂的药理干预之间的细胞信号传导有不同的作用[4-6]。 基因组和药理学干预之间的这种断开是由于激酶的非催化功能仅被基因组敲低而破坏[4-6]。 因此,激酶指导的Protac代表了靶向激酶的潜在进步,该激酶非催化功能对于细胞信号很重要。密歇根大学化学系,密歇根州安阿伯市930 N. University Ave.,48109。b。密歇根大学内科系,1500 E. Medical Ave.,Ann Arbor,MI 48109。 使用链接到E3连接酶配体的dasatinib的摘要,我们确定了有效的双CSK/C-SRC Protac Degrader。 然后,我们用构象选择性类似物代替了dasatinib,稳定c-shelix c-Src的构象。 使用A c螺旋外配体,我们确定了一种对C-SRC有效且有选择性的Protac。 使用我们的C-SRC Protac,我们确定了与癌细胞增殖相比,C-SRC降解的药理优势。 引言蛋白激酶(PKS)在细胞信号传导和调节关键生物学过程(包括增殖,分化和凋亡)中起着至关重要的作用[1-3]。 对于许多激酶,对基因组敲低(例如siRNA)与激酶抑制剂的药理干预之间的细胞信号传导有不同的作用[4-6]。 基因组和药理学干预之间的这种断开是由于激酶的非催化功能仅被基因组敲低而破坏[4-6]。 因此,激酶指导的Protac代表了靶向激酶的潜在进步,该激酶非催化功能对于细胞信号很重要。密歇根大学内科系,1500 E. Medical Ave.,Ann Arbor,MI 48109。使用链接到E3连接酶配体的dasatinib的摘要,我们确定了有效的双CSK/C-SRC Protac Degrader。然后,我们用构象选择性类似物代替了dasatinib,稳定c-shelix c-Src的构象。使用A c螺旋外配体,我们确定了一种对C-SRC有效且有选择性的Protac。使用我们的C-SRC Protac,我们确定了与癌细胞增殖相比,C-SRC降解的药理优势。引言蛋白激酶(PKS)在细胞信号传导和调节关键生物学过程(包括增殖,分化和凋亡)中起着至关重要的作用[1-3]。对于许多激酶,对基因组敲低(例如siRNA)与激酶抑制剂的药理干预之间的细胞信号传导有不同的作用[4-6]。基因组和药理学干预之间的这种断开是由于激酶的非催化功能仅被基因组敲低而破坏[4-6]。激酶指导的Protac代表了靶向激酶的潜在进步,该激酶非催化功能对于细胞信号很重要。c-Src是一种酪氨酸激酶,是发现的第一个原始癌基因,并且在癌症中经常过表达[7-9]。虽然机制仍然鲜为人知[9],但C-SRC过表达的程度通常与恶性肿瘤的转移潜力相关,并且抑制C-SRC已被证明会降低小鼠的乳腺癌转移[10]。c-Src通过遗传敲低被验证为许多实体瘤的目标。然而,药理学抑制(无论是在临床还是临床前模型中)导致信号传导表型与遗传敲低不同[10]。敲低(例如,siRNA),三阴性乳腺癌(TNBC)和基底膀胱癌表现出降低和侵袭特性[10,11]。不幸的是,对C-SRC的小分子抑制剂的研究(包括:dasatinib,bosutinib和Ponatinib)未能概括从C-SRC的遗传敲低的强抗癌表型中,并且在诊所没有成功[10,11]。Protac提供了一种化学敲低的手段[12],因此我们有兴趣开发C-SRC的Protac。结果和讨论设计和评估C-SRC定向Protacs。为了识别C-SRC的PROTAC,我们设想将dasatinib(一种有效的C-SRC/ABL激酶抑制剂)与Thalidomide(Cereblon E3连接酶配体)结合在一起。据报道,基于dasatinib的daSatinib的protac是为了降解C-ABL和BCR-ABL,包括DAS-6-2-2-6(图1)[13]。我们希望DAS-6-2-2-6能够降解C-SRC,但是我们观察到Cal148细胞中C-SRC没有降解(18小时时100 nm)。与Protac文献一致[14],我们假设在DAS-6-2-2-6中发现的柔性且较长的接头不适合降解C-SRC。