苏打湖是具有高碱度和盐分的独特聚会环境,尽管具有极端的性质,但仍支持各种微生物群落。在这项研究中,使用Amplicon测序确定了三个苏打湖,阿比亚塔湖,Chitu湖和沙拉湖的样品中的原核和真核微生物多样性。与培养的分析显示,所有三个苏打湖中原核和真核微生物群落的多样性都比以前报道的要高。通过非依赖性的扩增子测序发现了总共3,603个原核生物和898个真核操作分类单元(OTU),而只有134个细菌Otus仅通过丰富的培养物获得3%。这表明在实验室条件下只能培养这些栖息地的微生物的一部分。在三个苏打湖中,来自奇图湖的样品显示出最高的原核多样性,而沙拉湖的样品显示出最低的多样性。Pseudomonadota ( Halomonas ), Bacillota ( Bacillus , Clostridia ), Bacteroidota ( Bacteroides ), Euryarchaeota ( Thermoplasmata , Thermococci , Methanomicrobia , Halobacter ), and Nanoarchaeota ( Woesearchaeia ) were the most common prokaryotic microbes in the three soda lakes.鉴定出高度多样性的真核生物,主要由Ascomycota和basidiomycota代表。与其他两个湖泊相比,在阿比亚塔湖(Lake Abijata)发现了更多的真核OTU。本研究表明,这些独特的栖息地具有多种微生物遗传资源,并可能在生物技术应用中使用,应通过功能性宏基因组学进一步研究。
基于循环肿瘤 DNA (ctDNA) 的分子分析正在通过多基因下一代测序 (NGS) 面板在晚期癌症患者的临床实践中迅速获得关注。然而,临床结果仍然描述不详,需要通过对血浆 ctDNA 中检测到基因组改变的患者进行个性化治疗来进一步验证。在这里,我们描述了通过 ctDNA 液体活检检测 InVisionFirst ® -Lung 在血浆中发现可操作改变的致癌成瘾晚期 NSCLC 患者的结果、3 个月时的疾病控制率 (DCR) 和无进展生存期 (PFS)。对 81 名晚期 NSCLC 患者进行了汇总回顾性分析,这些患者具有预测对目前 FDA 批准药物有反应的所有类型的改变:致敏常见 EGFR 突变(78%,n = 63)和 T790M(73%,46/63)、ALK / ROS1 基因融合(17%,n = 14)和 BRAF V600E 突变(5%,n = 4)。所有患者均通过先前的组织基因组分析确认了液体活检中检测到的可操作驱动改变,并且所有患者都接受了个性化治疗。在接受匹配靶向治疗的 82 名患者中,10% 为一线患者,41% 为二线患者,49% 为二线以上患者。 73% (46/63) 的患者在 TKI 复发时被检测到获得性 T790M,所有潜在患者 (34/46) 均根据 ctDNA 结果开始奥希替尼治疗。81 名可评估患者的 3 个月 DCR 为 86%。中位 PFS 为 14.8 个月 (12.1-22.9 个月)。基线 ctDNA 等位基因驱动基因分数与个性化治疗的反应率无关 (p = 0.29)。ctDNA 分子分析是一种准确可靠的工具,可用于检测晚期 NSCLC 患者中临床相关的分子改变。靶向治疗的临床结果支持将基于扩增子的 NGS ctDNA 分析液体活检用于晚期 NSCLC 患者的一线和复发检测。
乙型肝炎病毒(HBV)全基因组测序(WGS)目前受到限制,因为许多临床样品的DNA病毒载荷(VL)低于使用当前测序方法产生完整基因组所需的阈值。我们使用基于探针的捕获和瓷砖放大器PCR(Hep-tile)开发了两种泛基因型病毒富集方法,用于HBV WGS。我们使用模拟样品证明了这两种富集方法都是泛基因型(基因型A-J)。使用临床样品,我们证明了HEP-TILE放大成功地放大了最低的HBV VL测试(30 IU/ mL)的完整基因组,并且可以使用纳米孔和Illumina平台对PCR产物进行测序。基于探针的捕获,具有Illumina测序需要VL> 300,000 IU/mL,以生成全长HBV基因组。捕获 - 紫罗兰和Hep-tile-nanopore管道在具有已知DNA序列的模拟样品中具有100%的共识测序精度。一起,这些方案将促进HBV序列数据的产生,从而使HBV分子流行病学的更准确,更具有代表性的描述,对持久性和发病机理进行启示,并增强对感染及其治疗结果的理解。
底漆设计:对于在快速循环条件下有效扩增,我们建议在80bp和200bp之间的扩增子长度。与所有制造商主人混合了较短的扩增子长度,反应可以循环越快。放大长度不得超过400bp。引物应使用默认引物3设置(https://bioinfo.ut.ee/primer3/)的预测熔点约为60°C。对于Taqman®探针,选择接近5'底漆的探针,避免终末鸟苷残基。对于Taqman®探针,选择接近5'底漆的探针,避免终末鸟苷残基。
Illumina在Imlumina平台上测序在Illumina平台上测序的cleanplex amplicon库工作流程设置建议建议使用Illumina的本地运行经理(LRM)DNA Amplicon分析模块进行分析。LRM DNA扩增子分析模块v2.1.0可在ISEQ(控制软件V1或V2),Miseq(MCS V3),NextSeq 500/550(NCS 4.0)和NextSeq 500DX(NCS 4.0)上获得。LRM DNA扩增子分析模块v3.0.0.14可在Miseq(MCS v4.0)上获得。这些说明是一个简单的摘要,描绘了如何为已经完成的运行设置分析,或设置新运行以包括分析。样品必须通过基因组进行分析以进行分析:如果在一个测序运行中存在不同的基因组,则只能设置新运行以用一个基因组进行运行分析。但是,这些样品可以在同一运行中进行测序,然后通过基因组分批分析。如果测序运行中的所有样本均来自同一基因组,则用户可以使用任何一种分析方法。此模块对齐扩增子读取针对清单文件中指定的参考,并要求变体针对目标区域。工作流程还产生了运行质量和覆盖信息的摘要报告。有用的提示和资源:●有关其他详细信息和故障排除,请参阅Illumina的最新本地运行经理DNA
过程如下:在体外转录GRNA。cas9和grnas微注射到C57BL/6JGPT小鼠的受精卵中。受精卵被移植以获得通过PCR和靶标扩增子测序确认的阳性F0小鼠。通过与C57BL/6JGPT小鼠配对阳性F0产生小鼠获得稳定的F1生成小鼠菌株,并通过PCR和靶向Agplicon测序对所需的突变等位基因进行确认。
用Cas9核糖核蛋白(Cas9核酸酶)在体外消化PCR扩增子是检测indectels的敏感测定法。与不匹配检测分析不同,CAS9具有确定靶向效率超过50%的额外优势。这是有价值的,因为在基因组编辑实验中的靶向效率增加并用于检测分离的细胞菌落或组织中的双重编辑,并且以前仅使用专用PCR或Amplicon测序方法才能实现。
图1。Alt-R A.S. CAS12A超蛋白在TTTV目标位点选择方面表现出卓越的性能。 DOTS代表了216个指南的等级编辑效率,该指南靶向TTTV(深色阴影)或TTTN(浅色阴影)PAM站点,并且在输送到HEK-293细胞(96个位点)和陪同下(96个位点)和陪同细胞(96个位点)和野生型CAS12A V3(绿色)V3(绿色)或Cas12a Ultra(蓝色)。 如Alt-R CRISPR-CAS12A用户指南中所指示的RNP 人类细胞使用4D-Nucleofector™System(LONZA)的RNP电穿孔。 使用NGS(Rhampseq Amplicon测序)进行电穿孔后48小时编辑效率。Alt-R A.S. CAS12A超蛋白在TTTV目标位点选择方面表现出卓越的性能。DOTS代表了216个指南的等级编辑效率,该指南靶向TTTV(深色阴影)或TTTN(浅色阴影)PAM站点,并且在输送到HEK-293细胞(96个位点)和陪同下(96个位点)和陪同细胞(96个位点)和野生型CAS12A V3(绿色)V3(绿色)或Cas12a Ultra(蓝色)。人类细胞使用4D-Nucleofector™System(LONZA)的RNP电穿孔。使用NGS(Rhampseq Amplicon测序)进行电穿孔后48小时编辑效率。编辑效率。
与简短的读数相比,覆盖范围仅限于ITS1或ITS2区域,HIFI读取的读数涵盖了全真菌其区域的全长。这包含800 bp,如果包括18s和/或28S基因以跨越操纵子,则可以提供约5 kb的扩增子。以及更保守的rRNA基因,这些区域允许在物种水平上降低序列相似性和更高分辨率的分类信息(Tedersoo等,2018; Tedersoo等人,2021年,图2)。除了产生更高的分类价值外,HIFI全长扩增子测序的成本与短阅读的部分扩增子测序相当。在本申请注释中,我们提供了从复杂社区DNA样品中扩增全长真核ITS和rRNA区域的一般指导。