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遗传改性细胞的基因分型是针对转基因和基因组编辑的至关重要的步骤,例如CRISPR/CAS等系统。检测基因组编辑事件可以与所使用的基因分型方法直接相关,该方法受其成本影响,因为许多实验需要分析大量样品。这项研究的目的是比较基因组DNA(GDNA)提取的直接裂解方法的性能,以检测原代山羊细胞中的敲蛋白和敲除。最初,使用差异量(1,000、5,000和10,000个细胞)和goat Ortiparts(fibroblblasts and fibroblblasts and gote anctermarem Migalsmary Migalmary Migalmary Migalmary Migatiars Migatiars Migatiars)测试了三种GDNA提取方案(方案A,水中的温度A; Prote变性/冻结;小(GAPDH)和大扩增子(HLF转基因)的PCR扩增。所有方案在检测小扩增子方面均成功;但是,在GMEC中,只有协议B仅导致有效的扩增(协议A - 0%,协议B- 93%,协议C- 13.33%,p <0.05)。In a proof- of-principle experiment, the TP53 gene was knocked out in GMECs by CRISPR/Cas9-medi- at​​ed deletion while constructs containing the anti-VEGF monoclonal antibody (pBC-anti- VEGF) and bacterial L-Asparaginase (pBC-ASNase) transgenes were knocked-in sepa- rately in fibroblasts.使用协议B和PCR进行了成功编辑的检测。根据PCR,PBC-ASNase和PBC-Anti-VEGF转基因的整合速率分别为93.6%和72%。使用CRISPR/CAS9对TP53缺失在GMEC中的双重编辑效率为5.4%。我们的结果表明,方案B(热变性/蛋白酶K)可以用作一种廉价且快速的方法,用于检测不同类型的原代山羊细胞中的遗传修饰,其效率率与先前使用提取试剂盒或更复杂的蛋白酶K配方中先前描述的值一致。

NPC中CDC25C的下调干扰了皮质神经发生编辑的原代山羊细胞

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