背景:CRISPR/Cas 和 TALEN 技术的进步激发了人们对植物基因编辑机会的兴奋。CRISPR/Cas 被广泛用于通过诱导靶向双链断裂 (DSB) 来敲除或修改基因,而双链断裂主要通过易出错的非同源末端连接或微同源介导的末端连接进行修复,从而导致可能改变或消除基因功能的突变。尽管此类突变是随机的,但它们发生的频率足以使有用的突变能够通过筛选定期识别。相比之下,用替代等位基因或具有特定特征修饰的拷贝替换整个基因的基因敲入目前还不常见。通过同源定向修复进行基因替换(或基因靶向)在高等植物中发生的频率极低,使得筛选有用事件变得不可行。通过抑制非同源末端连接和/或刺激同源重组 (HR) 可以增加同源定向修复。在这里,我们通过评估多种异源重组酶表达对烟草植物染色体内同源重组 (ICR) 的影响,为提高基因置换效率铺平了道路。结果:我们在含有高度敏感的 β -葡糖醛酸酶 (GUS) 型 ICR 底物的烟草转基因系中以不同的组合表达了几种细菌和人类重组酶。使用病毒 2A 翻译重编码系统实现了多种重组酶的协调同时表达。我们发现大多数重组酶在花粉中显著增加了 ICR,其中 HR 将由减数分裂期间发生的程序化 DSB 促进。DMC1 表达在初级转化体中产生了对 ICR 的最大刺激,其中一种植物的 ICR 频率增加了 1000 倍。对纯合 T2 植物系中的 ICR 的评估表明,ICR 增加了 2 倍到 380 倍,具体取决于表达的重组酶。相比之下,营养组织中的 ICR 仅适度增加,异源重组酶的组成性表达也降低了植物的育性。结论:异源重组酶的表达可以大大增加植物生殖组织中 HR 的频率。将此类重组酶表达与使用 CRISPR/Cas9 诱导 DSB 相结合可能是从根本上提高植物基因替换效率的途径。
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